Санационные методы при заболевания легких

Ведущие пульмонологи Ростова — На — Дону

Ануфриев Игорь Иванович пульмонолог — Доцент кафедры фтизиатрии и пульмонологии Ростовского государственного медицинского университета, заведующий отделением пульмонологии Ростовского государственного медицинского университета.

Боханова Елена Григорьевна — Заведующая терапевтическим отделением, кандидат медицинских наук, врач высшей категории, ассистент кафедры пропедевтики внутренних болезней РостГМУ, врач-пульмонолог.

Киртанасова Людмила Николаевна — врач — пульмонолог высшей квалификационной категории.

Редактор страницы: Санационные методы при заболевания легких: Турбеева Е.А.

***********************

Книга «Болезни органов дыхания Том 1.» (Автор Н.Р. Палеева).

Санационные методы

К бронхологическим методам, применяемым с лечебной целью, относятся так называемые санационные методы, обеспечивающие очищение бронхиального дерева от избыточного содержимого и эндобронхиальное лекарственное воздействие на патологический процесс в легком, а также различные эндоскопические инструментальные лечебные вмешательства в трахее и крупных бронхах.

Эндобронхиальная терапия, получившая название санации бронхиального дерева, включает различные методики, большинство из которых связано с применением бронхоскопии.

Бронхоскопия с лечебной целью может быть выполнена бронхофиброскопом и жестким бронхоскопом как под местным, так и под общим обезболиванием. Для санации бронхиального дерева у взрослых чаще применяют бронхофиброскопию под местной анестезией. Лечебную бронхофиброскопию производят в бронхоскопическом кабинете, но она может быть выполнена и в других помещениях, в том числе при тяжелом состоянии больного непосредственно в палате.

Первым этапом бронхоскопии являются осмотр трахеи и бронхов, установление характера и распространенности воспалительных изменений. Осмотр и санацию бронхов обычно начинают с той стороны, где патология предположительно менее выражена, и завершают зоной основного поражения. Туалет бронхиального дерева включает тщательную последовательную аспирацию содержимого из долевых и сегментарных ветвей, промывание их индифферентным или антисептическим раствором, введение лекарственных веществ.

Аспирацию содержимого бронхов при лечебной бронхофиброскопии производят через инструментальный канал бронхофиброскопа.

В связи с небольшим диаметром инструментального канала аспирация вязкого бронхиального секрета нередко становится возможной только после эндобронхиальной инстилляции изотонического раствора натрия хлорида или другого раствора, которая., производится порционно по 5-20 мл. Общее количество инстиллируемого раствора варьирует от 20 до 100 мл.

Лечебную бронхоскопию жестким бронхоскопом чаще выполняют под наркозом. Аспирацию содержимого бронхов производят с помощью специальных металлических аспирационных трубок, причем минимальную травматизацию слизистой оболочки обеспечивает применение трубок с резиновыми наконечниками. Сравнительно большой диаметр аспирационных трубок позволяет производить удаление секрета практически любой консистенции.

Выбор лекарственных веществ для эндобронхиального введения в конце бронхоскопии зависит от характера воспалительного процесса.

Лечебная катетеризация бронхов для санации одиночных полостей распада или ограниченных очагов воспаления в легком может быть вспомогательной процедурой, выполняемой во время бронхоскопии, или являться самостоятельной лечебной методикой.

Катетеризация бронхов во время бронхофиброскопии осуществляется полиэтиленовым катетером, проводимым через инструментальный канал бронхофиброскопа. Устье сегментарного или субсегментарного бронха, подлежащего катетеризации, определяют на основании уточнения локализации патологического процесса по рентгенограммам грудной клетки с учетом эндоскопических данных (поступление гнойного содержимого из устья бронха, дренирующего полость распада).

При бронхоскопии жестким бронхоскопом катетеризацию бронхов выполняют рентгеноконтрастными сердечными катетерами диаметром 2,5-3,5 мм. Концу катетера.заранее придают изгиб, облегчающий прохождение в нужный сегмент. Для управления катетером и продвижения его в намеченном направлении используют специальные металлические трубки-направители или упругий стальной мандрен, вводимый в просвет катетера.

Самостоятельной лечебной процедурой является катетеризация бронхов, не связанная с лечебной бронхоскопией или завершающаяся оставлением катетера в полости распада на длительный срок.

К таким пособиям, в частности, относится методика проведения сердечного катетера через резиновую трубку диаметром 5-8 мм, вводимую в трахею. Катетер, смоделированный в соответствии с расположением дренирующего бронха, проводят в полость распада под рентгенологическим контролем. Как и при любом способе катетеризации, через катетер осуществляют.промывание бронхов и полостей распада, введение лекарственных веществ. Такая методика проведения катетера может быть использована также для длительной катетеризации полости абсцесса.

Другой разновидностью длительной катетеризации полости абсцесса является метод, связанный с применением бронхофиброскопии [Лукомский Г. И. и др., 1982].

Через инструментальный канал бронхофиброскопа в полость распада под контролем рентгенотелевидения проводят тонкий рентгеноконтрастный направляющий катетер, длина которого вдвое больше длины бронхоскопа. В качестве направителя может быть использован обычный полиэтиленовый катетер с вводимой в него для контрастирования тонкой стальной проволокой или специальный проводник для чрескожной катетеризации сосудов и сердца по методике Сельдингера. Затем бронхофиброскоп извлекают, а по оставленному направляющему катетеру в полость абсцесса проводят рентгеноконтрастный катетер с более широким просветом. Через катетер производят 2-3 раза в сутки аспирацию содержимого, промывание полости абсцесса, введение лекарственных веществ. Длительность пребывания катетера в полости составляет 4-8 дней.

Санацию бронхов с помощью микротрахеоцентеза выполняют через тонкий катетер, вводимый в трахеобронхиальное дерево чрескожно.

В положении больного на спине с валиком под плечами и откинутой головой, в асептических условиях, под местной инфильтрационной анестезией в межхрящевом промежутке ниже перстневидного хряща иглой с диаметром просвета 2 мм прокалывают трахеальную стенку. Катетер диаметром 1,5-2 мм проводят через иглу До бифуркации трахеи.

Удобно производить микротрахеоцентез под контролем бронхофиброскопии. В таких случаях предварительно осуществляют местную анестезию верхних дыхательных путей. После выполнения микротрахеоцентеза в трахею вводят бронхофиброскоп и под визуальным контролем с использованием бронхофиброскопических щипцов направляют катетер в нужный отдел трахеобронхиального дерева.

На шее катетер закрепляют лейкопластырем, накладывают стерильную повязку. Истилляцию лекарственных веществ через катетер производят 2-4 раза в сут.

Эндотрахеальные вливания выполняют через резиновый катетер или с помощью гортанного шприца под местной анестезией. У больных со сниженным кашлевым рефлексом процедуру удается проводить без анестезии.

Катетер вводят в трахею через носовой ход в положении сидя. Направление в трахею достигается отклонением головы назад и оттягиванием языка кпереди. Через голосовые складки катетер проводят при глубоком вдохе.

Эндотрахеальные вливания можно выполнять и гортанным шприцем под контролем непрямой ларингоскопии. Инстилляцию лекарственных веществ производят при наклоне туловища больного в сторону пораженного легкого.

Перед процедурой больной максимально откашливает мокроту с помощью постурального дренажа.

При санации бронхиального дерева эндобронхиально инсталлируют лекарственные вещества, подавляющее патогенную микробную флору, разжижающие бронхиальный секрет, оказывающие противовоспалительное и противоотечное действие на слизистую оболочку, способствующие устранению бронхоспазма.

В качестве противомикробных препаратов часто используют антибиотики, предназначенные для парентерального применения. Выбор антибиотика зависит от чувствительности микробной флоры. Для санации бронхиального дерева на фоне общей антибактериальной терапии эндобронхильно и парентерально назначают одни и те же антибиотики. К числу вводимых эндобронхиально антибиотиков относятся пенициллин и полусинтетические пенициллины, стрептомицин, цефалоспорины (цепорин, кефзол), тетрациклины, левомицетин и др.

Доза инстиллируемого антибиотика аналогична таковой при внутримышечном введении.

Для санации бронхиального дерева используют также анти-септические средства - 0,02 % раствор фурацилина и 0,1% раствор фурагина, обладающие антимикробной бактериостатической и бактерицидной активностью широкого спектра. Антисептические растворы применяют как для промывания бронхов перед введением других лекарственных препаратов, так и в качестве основного действующего вещества.

Сравнительно редко с целью антибактериального действия инстиллируют растворы сульфаниламидов.

Для понижения вязкости бронхиального секрета используют муколитические препараты. К ним относятся, в частности, протеолитические ферменты, катализирующие гидролиз пептидных связей в белках. Для эндобронхиального введения применяют трипсин, химотрипсин, РНКазу, ДНКазу в количестве 25-50 ЕД. На волокна кислого гликопротеина, обусловливающие вязкость слизистого секретр, более сильное литическое действие оказывают трипсин и химотрипсин, на волокна рибонуклеина, содержащиеся в гнойном секрете, - РНКаза, ДНКаза. Протеолитические ферменты обладают также противовоспалительными свойствами, повышают чувствительность микрофлоры к антибиотикам. Перед инстилляцией ферменты растворяют в 3 мл изотонического раствора натрия хлорида.

Выраженное муколитическое влияние оказывает ацетилцистеин. Эндобронхиально вводят 5-10 % раствор ацетилцистеина в количестве 3-10 мл. Препарат содержит свободные сульфгидридные группы, способные разрушать дисульфидные связи гликозаминогликанов, вызывая деполяризацию последних и уменьшение вязкости как слизистого, так и гнойного секрета.

К муколитическим препаратам, применяемым эндобронхиально, относится также бромгексин, вызывающий деполяризацию и расщепление мукопротеиновых и гликозаминогликановых волокон.

Для эндобронхиального применения ампулу, содержащую 2-4 мл препарата, разводят в соотношении 1:1 дистиллированной водой.

Бронхолитическое действие оказывают препараты трех основных групп: аДреномиметические (эфедрин, адреналин, нафтизин и др.), холинолитические (атропин), метилксантины (эуфиллин). Эндобронхиально чаще инстиллируют 1 мл 5 % раствора эфедрина, 1 мл 0,1 % раствора адреналина, 5-10 мл 2,4 % раствора эуфиллина. При введении адреномиметических препаратов^ улучшение бронхиальной проходимости наступает вследствие как бронходилатации, так и уменьшения отека слизистой оболочки бронхов за счет местного сужения сосудов. К эффективным бронхолитическим препаратам, вводимым ингаляционным путем для предупреждения бронхоспазма или борьбы с ним, относятся p-адреномиметические вещества: изадрин (беротек), сальбутамол, алупент (астмомент).

Для борьбы с отеком и воспалением эндобронхиально применяют гормональные препараты, в частности суспензию гидрокортизона в количестве 1-2 мл (25-50 мг).

Показания к применению и выбор методики санации бронхиального дерева при различных заболеваниях легких зависят от вида патологии, характера воспалительных изменений бронхов. Перед назначением курса эндобронхиальной терапии наряду с оценкой особенностей клинического течения заболевания, рентгенологической картины, эффективности медикаментозного лечения обычно проводят лечебно-диагностическую бронхоскопию. Бронхоскопическое исследование позволяет оценить протяженность и выраженность воспалительных изменений бронхиального дерева, составить представление о зоне наибольшего поражения, диагностировать функциональные нарушения типа трахеобронхиальной дискинезии.

Выявление при эндоскопии гнойного воспалительного процесса служит основанием для эндобронхиального применения веществ, оказывающих антимикробное действие. При наличии вязкого слизистого секрета показано применение муколитических средств.

Продолжительность курса санации варьирует от 10 до 20 дней. Лишь у единичных больных с распространенным нагноительным процессом назначают более длительное эндобронхиальное лечение. Частым вариантом эндобронхиальной терапии является сочетание повторных лечебных бронхоскопий с эндотрахеальными вливаниями лекарственных веществ в промежутки времени между бронхоскопиями. Лечебную бронхоскопию Жестким бронхоскопом производят 1-2 раза в нед, иногда более часто - 3-4 раза в нед. В течение курса санации, как правило, выполняют не более 8-10 лечебных бронхоскопий.

У отдельных больных, в частности у больных с повышенной реактивностью трахеобронхиального дерева, проявляющейся массивной гиперсекрецией слизи или бронхоспастической реакцией на эндобронхиальное введение лекарственных веществ, санация бронхиального дерева затруднена и не позволяет достигнуть отчетливого лечебного эффекта. Использование с целью предупреждения бронхоспазма спазмолитических средств, как правило, дает возможность провести полноценную эндобронхиальную терапию.

Противопоказанием к санации бронхиального дерева служат массивное кровохарканье и кровотечение. При лечении больных со стенокардией нецелесообразно применять эндобронхиальные методы до ликвидации явлений коронарной недостаточности, а также у больных гипертонической болезнью с высоким артериальным давлением. Эффективность эндобронхиальной терапии снижается при выраженной сердечно-легочной недостаточности. Однако учитывая, что в таких случаях отягощающим, а нередко ведущим фактором является обструкция бронхов вязким секретом, нельзя считать сердечно-легочную недостаточность абсолютным противопоказанием к санации бронхиального дерева.

Инстилляция сравнительно небольшого количества жидкости является составной частью лечебной бронхоскопии и санации бронхиального дерева, обеспечивая удаление содержимого преимущественно бронхов крупного и среднего калибра. Промывание бронхов, или лечебный БАЛ, является самостоятельной лечебной процедурой, при которой эндобронхиально инстиллируют значительный объем жидкости - от 100 до 1500 мл в бронхи одного легкого. Таким путем достигается вымывание содержимого из всех отделов респираторного тракта, в том числе из мельчайших бронхиальных ветвей и альвеол.

В клинической практике нашли применение две основные разновидности лечебного БАЛ - промывание бронхиального дерева через бронхоскоп и лаваж легкого через интубационную трубку.

Бронхоскопический БАЛ обычно производят через жесткий бронхоскоп под наркозом.

Вентиляцию легких осуществляют инжекционным способом, обеспечивающим адекватный газообмен при открытом тубусе бронхоскопа, что создает более благоприятные условия для выполнения процедуры и сокращает время ее выполнения. Эндобронхиально через катетер диаметром 2,5-3 мм инстиллируют изотонический раствор натрия хлорида, подогретый до температуры тела.

Хорошо зарекомендовало себя последовательное промывание бронхиальных ветвей каждой доли легкого [Лукомский Г. И. и др., 1982]. Введение катетера в нужный долевой или сегментарный бронх выполняют с помощью направителей и других приспособлений. В каждую долю инстиллируют 100-200 мл изотонического раствора натрия хлорида. При некоторых заболеваниях легких (муковисцидоз) для лаважа применяют раствор ацетилцистеина.

Раствор удобно вводить шприцем емкостью 150 мл. Сразу же после инстилляции осуществляют аспирацию поступающего из просветов бронхов раствора и вымываемого бронхиального содержимого. Инстилляцию и аспирацию раствора можно выполнять одновременно. Для этого параллельно с катетером в бронхиальное дерево вводят металлическую трубку - аспиратор. Если при аспирации отмечается значительная примесь бронхиального секрета и мелких слепков бронхов, то лаваж бронхов повторяют. Объем инстиллируемого раствора при бронхоскопическом лаваже бронхов обычно варьирует от 500 до 1500 мл. При обструктивных изменениях в бронхиальном дереве удается аспирировать половину или одну треть вводимого объема жидкости.

Жидкость, инсталлируемая при лаваже бронхов, достигает как мельчайших бронхиальных ветвей, так и альвеол, взаимодействуя с сурфактантным покрытием и альвеолярными клеточными элементами. В результате происходят частичное вымывание сурфактанта, альтерация клеток, развивается интерстициальный отек, снижается растяжимость легких, ухудшаются условия газообмена. Однако возникающие при этом умеренные нарушения функции дыхания исчезают через 24-48 ч.

Лечебный БАЛ нашел применение у больных бронхиальной астмой с приступами удушья и астматическим состоянием, с трудом поддающимися обычному лечению. По мере совершенствования интенсивной лекарственной терапии бронхиальной астмы показания к применению БАЛ возникают все реже.

Поскольку вместе с инсталлируемым раствором в альвеолы попадает бронхиальное содержимое, следует избегать массивного БАЛ при гнойном воспалительном процессе в бронхиальном дереве. При нагноительном процессе, часто наблюдающемся при таких заболеваниях, как муковисцидоз, для предупреждения инфицирования альвеол и обеспечения эффективного удаления бронхиального содержимого более рационально выполнять БАЛ небольшим количеством раствора при однократном введении не более 10-20 мл и общем объеме инсталлируемой жидкости не более 200 мл. Такая методика получила название БАЛ небольшими объемами жидкости, или «щадящего» БАЛ, и нашла применение как при бронхоскопии жестким бронхоскопом, так и в условиях бронхофиброскопии.

Тотальный БАЛ через интубационную трубку производят под наркозом на фоне однолегочной вентиляции (рис. 37.1). Применение двухпросветной интубационной трубки с раздуваемыми резиновыми манжетками обеспечивает герметизацию обоих легких с целью как раздельной вентиляции, так и предупреждения забрасывания инстиллируемой жидкости в бронхиальное дерево противоположной стороны. Для контроля за правильным положением двухпросветной интубационной трубки могут быть использованы данные аускультации легких, рентгенологическое исследование, бронхофиброскоп с диаметром тубуса 3 мм, проводимый через один из просветов трубки.

Вначале производится ИВЛ обоих легких, затем лаважируемое легкое выключают из процесса дыхания. Через просвет интубационной трубки в главный или промежуточный бронх вводят полиэтиленовый катетер диаметром 2,5-3 мм, через который осуществляют инстилляцию подогретого до температуры тела изотонического раствора натрия хлорида. Метод предусматривает тотальное заполнение легкого жидкостью. Это достигается путем одномоментной инстилляции 1000-1500 мл раствора. О тотальном заполнении свидетельствует обратное поступление жидкости через просвет интубационной трубки. Поступающую жидкость вместе с вымываемым бронхоальвеолярным содержимым аспирируют через катетер или просвет интубационной трубки* В отсутствие выраженных обструктивных изменений бронхов аспирируют 90-95 % вводимой жидкости. БАЛ обычно повторяют несколько раз.

Количество промываний легкого в течение одной процедуры и общий объем инстиллируемого раствора устанавливают на основании визуальной оценки жидкости, поступающей из легкого. БАЛ завершают после того, как примесь бронхоальвеолярного содержимого становится незначительной, а поступающая жидкость - почти прозрачной. Объем инстиллируемого изотонического раствора натрия хлорида при тотальном лаваже легкого у отдельных вольных составляет 10 л и более. При хорошей переносимости в течение одного сеанса может быть выполнен последовательный БАЛ обоих легких. Тотальный БАЛ через интубационную трубку обеспечивает вымывание содержимого как бронхов, так и альвеол, является наиболее эффективным способом лечения альвеолярного протеиноза.

Бронхоскопическое удаление инородных тел бронхов. Современный бронхологический инструментарий обеспечивает удаление абсолютного большинства инородных тел бронхов.

Извлечению инородного тела бронхов предшествует эндоскопическое уточнение его разновидности, размеров и расположения. В соответствии с этими данными выбирают способ извлечения и бронхоскопический инструментарий. Бронхоскопия жестким бронхоскопом обладает более высокими возможностями при извлечении инородных тел, чем бронхофиброскопия. Преимущество первого метода в значительной степени связано с обеспечением более надежного захватывания инородного тела щипцами, являющегося одним из основных элементов процедуры. Но и бронхофиброскопический инструментарий, несмотря на относительную миниатюрность, позволяет достаточно прочно захватить и удалить инородные тела бронхов у большинства больных. При подозрении на инородное тело в качестве первого лечебнодиагностического бронхологического исследования показано выполнение бронхофиброскопии под местной анестезией как более легко переносимого и простого метода. Лишь при невозможности бронхофиброскопического извлечения инородного тела целесообразно применение бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом. С самого начала прибегать к этому методу следует у детей младше 10 лет, при крупных инородных телах, осложненных дыхательной недостаточностью и массивным кровохарканьем, при противопоказаниях к применению местной анестезии.

Иногда целесообразно сочетанное применение обоих видов бронхоскопии с проведением бронхофиброскопа через тубус жесткого бронхоскопа, в частности у детей с инородным телом в сегментарных бронхиальных ветвях, труднодоступных для подведения «ригидных» щипцов.

Для удаления инородных тел бронхов с помощью бронхофиброскопа его предпочтительно вводить через ротовую полость. Основным видом инструментария, применяемого для извлечения инородных тел, являются гибкие щипцы диаметром около 2 мм с зубчатыми браншами (типа «аллигатор» и др.). Реже используются щипцы захватывающего типа с зубьевидными или ложкообразными захватами. При округлых инородных телах применяют захваты корзиночного типа, которыми пользуются также в гастроэнтерологии для удаления желчных камней.

Бронхофиброскоп может быть подведен к инородному телу, расположенному в любом отделе бронхиального дерева от трахеи до субсегментарных ветвей.

После захватывания инородного тела щипцами его удаляют вместе с бронхофиброскопом. Визуальный контроль за продвижением инородного тела по бронхам и трахее продолжают непрерывно вплоть до его проведения через голосовую щель и извлечения в ротовую полость.

При извлечении инородного тела через жесткий бронхоскоп чаще всего пользуются щипцами с зубчатыми браншами, которыми удобно извлекать твердые инородные тела плоской или неправильной формы, не склонные к крошению. Для удаления ядра ореха или других предметов, которые при захватывании могут быть легко раздроблены, применяют щипцы с рифлеными окончатыми или сравнительно тонкими уплощенными браншами. С целью извлечения округлых инородных тел используют щипцы со сферическими браншами.

После подведения тубуса бронхоскопа как можно ближе к инородному телу его захватывают щипцами, подтягивают к тубусу и при небольших размерах удаляют через его просвет, а при размерах, превышающих диаметр бронхоскопической трубки, извлекают вместе с бронхоскопом.

Удаление инородных тел органического происхождения, длительно находившихся в бронхиальном дереве, затруднено из-за сопутствующего нагноительного процесса и стеноза бронха вследствие разрастания грануляционной ткани и утолщения слизистой оболочки. Выполнение процедуры облегчается при соблюдении некоторых условий. Следует с осторожностью производить осмотр бронхов и аспирацию бронхиального содержимого, не прикасаясь оптическим телескопом и аспиратором к легко кровоточащей слизистой оболочке во избежание даже небольшого кровотечения. Перед захватыванием инородного тела иногда требуется удалить кусаками прикрывающие его грануляции. Для уменьшения кровоточивости и отека целесообразна обработка слизистой оболочки сосудосуживающими препаратами.

Из ошибок и опасностей, связанных с удалением инородных тел бронхов, прежде всего следует отметить возможность смещения, а иногда заклинивания инородного тела в бронхиальной ветви, после чего бронхоскопическое извлечение становится невозможным. Причиной этого осложнения является надавливание во время захватывания щипцами на инородное тело, слабо фиксированное в просвете бронха. При игольчатой форме тела смещение может сопровождаться внедрением в бронхиальную стенку. Если во время бронхоскопии не удается захватить инородное тело без его смещения, то необходимо изменить способ извлечения.

Другой опасностью является возможность фрагментации хрупкого инородного тела и попадание обломков в мелкие бронхиальные ветви. Этого осложнения можно избежать, если не применять сильного сжатия инородного тела в момент захватывания и использовать щипцы соответствующего типа.

К редким осложнениям принадлежат повреждение бронхиальной стенки и кровотечение. К профилактическим мерам относятся: правильный выбор направления, в котором должно извлекаться инородное тело, исключение захватывания браншами щипцов бронхиальной стенки, постоянный визуальный контроль за продвижением инородного тела.

Временная лечебная окклюзия, или тампонада бронхов. Применяется как метод лечения пиопневмоторакса и остановки массивного легочного кровотечения.

Временная окклюзия бронхов при лечении острого пиопневмоторакса впервые была произведена у детей со стафилококковой деструкцией легких, позднее метод был внедрен при лечении взрослых больных [Путов Н. В. и др., 1981]. Использованию его предшествуют дренирование и активная аспирация содержимого плевральной полости. Показания к окклюзии бронхов возникают при продолжающемся массивном поступлении воздуха по дренажу, препятствующем расправлению легкого.

Бронхоскопическую окклюзию бронхов чаще производят на 2-5-е сутки после дренирования плевральной полости. На протяжении этого времени проводят интенсивную антибактериальную, дезинтоксикационную и общеукрепляющую терапию, позволяющую улучшить состояние больного.

Перед выполнением лечебной окклюзии бронхов необходимо определить локализацию бронхоплевральных свищей. Рентгенография грудной клетки, особенно при наличии рентгенограмм, выполненных до развития пиопневмоторакса, обеспечивает топическую диагностику свищей на основании локализации ограниченного деструктивного процесса в определенном участке легкого. Инструментальные способы диагностики с использованием бронхоскопии основаны на прекращении поступления воздуха в плевральную полость при тампонаде соответствующих бронхов, а также на выявлении бронхоплеврального сообщения путем введения окрашенной жидкости или газа эндобронхиально либо в плевральную полость.

Лечебную окклюзию бронхов поролоновой губкой выполняют во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом, предпочтительно в условиях рентгенобронхологического кабинета.

Тубус бронхоскопа устанавливают над устьем бронха, подлежащего окклюзии. Содержимое бронхов тщательно аспирируют, в зону окклюзии инстиллируют раствор антибиотика. Диаметр губки-блокатора должен в 2-3 раза превышать диаметр окклюзируемого бронха, чтобы не наступило ее смещения в другие отделы бронхиального дерева. С целью рентгенологического контроля за положением губки ее обрабатывают жидким или порошкообразным контрастным веществом. Поролоновую губку скручивают, захватывают щипцами и через тубус бронхоскопа вводят в просвет бронха, в котором она расправляется и плотно прилегает к бронхиальным стенкам.

Об успешной окклюзии бронхов свидетельствует прекращение поступления воздуха из полости плевры по дренажу. Рентгеноскопически можно наблюдать уменьшение остаточной плевральной полости и расправление легкого.

Продолжительность пребывания поролоновой губки в просвете бронха составляет 7-10 дней. При повторной бронхоскопии ее извлекают, аспирируют секрет, скопившийся дистальнее зоны окклюзии, и промывают бронхиальные ветви антисептическим раствором. Если во время бронхоскопии или в ближайшие дни возобновляется поступление воздуха в плевральную полость, то может быть произведена повторная окклюзия бронхов свежей поролоновой губкой.

В результате комплексного лечения с применением временной окклюзии заживление бронхоплевральных свищей и ликвидация плевролегочного нагноительного процесса достигаются у 80 % больных. Иногда сохраняется небольшая «сухая» остаточная плевральная полость. Достижение лечебного эффекта затруднено при большой протяженности деструктивного процесса и прогрессирующем его характере, при множественных бронхоплевральных свищах в различных долях легкого.

Осложнения временной окклюзии бронхов наблюдаются сравнительно редко. К ним относятся увеличение протяженности деструктивного процесса в легком, продвижение поролоновой губки в субсегментарные бронхиальные ветви и невозможность ее извлечения, миграция губки в проксимальные дыхательные пути, развитие воспаления бронхиальной стенки с вовлечением в процесс хрящей и формированием в отдаленные сроки рубцового стеноза бронха, образование бронхоэктазов.

Показанием к лечебной бронхоскопической тампонаде бронхов является массивное легочное кровотечение, угрожающее развитием асфиксии и не поддающееся остановке с помощью интенсивной медикаментозной терапии. Тампонада бронхов может быть элементом подготовки к срочному оперативному вмешательству (резекция легких) или являться самостоятельным способом лечения, в частности при наличии противопоказаний к хирургическому лечению.

Методика тампонады бронхов при массивном легочном кровотечении в основном аналогична временной эндобронхиальной окклюзии при пиопневмотораксе. Процедуру выполняют во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом в эндоскопическом кабинете или операционной. Бронхоскопическое исследование начинают с аспирации крови из дыхательных путей и визуальной диагностики. После уточнения долевой локализации источника кровотечения поролоновую губку вводят в долевой бронх.

Продолжительность тампонады бронхов при массивном легочном кровотечении составляет 24-48 ч. Губку извлекают при повторной бронхоскопии. Возобновление кровотечения после удаления губки и аспирации свертков крови наблюдается’ у трети больных, являясь основанием для повторной тампонады бронха.

Приблизительно столь же эффективна временная окклюзия бронхов зондом Фогерти, которую выполняют во время бронхо-фиброскопии под местной анестезией.

К эндобронхиальным хирургическим вмешательствам относятся бронхоскопические инструментальные лечебные манипуляции, направленные на устранение патологических образований трахеи и бронхов. Такие вмешательства могут быть самостоятельным видом радикального лечения некоторых заболеваний органов дыхания или служить вспомогательной процедурой, облегчающей подготовку к реконструктивным и другим трансторакальным операциям, а также являться паллиативным лечебным воздействием, направленным на восстановление проходимости воздухоносных путей при неоперабельных новообразованиях.

Наряду с традиционными эндобронхиальными оперативными вмешательствами, основанными на механическом воздействии с помощью щипцов или других специальных инструментов, в клинической практике нашли применение методики, связанные с использованием электрохирургической, криохирургической, лазерной и другой специальной аппаратуры.

Бронхоскопические оперативные вмешательства, условно называемые механическими, производят с помощью обычного эндоскопического инструментария и некоторых приспособлений, облегчающих выполнение эндобронхиальных лечебных манипуляций. Основными назначениями оперативных вмешательств являются удаление новообразований и устранение стенозов дыхательных путей.

Наиболее распространенным способом удаления патологических образований трахеи и бронхов является скусывание их биопсийными или иными щипцами во время бронхоскопии жестким бронхоскопом. Сравнительно малый объем ткани (около 3 мм), который может быть захвачен браншами щипцов, позволяет с помощью этого способа удалять относительно небольшие доброкачественные опухоли, грануляционные разрастания. Путем скусывания предпочтительно удалять новообразования, имеющие хорошо сформированную ножку [Перельман М. И. и др., 1981 ].

Механическое удаление производят в отсутствие выраженной кровоточивости ткани опухоли. Если во время скусывания одного из фрагментов ткани возникает умеренное кровотечение, то манипуляцию прекращают и принимают меры, направленные на остановку кровотечения, используя как лекарственные препараты, так и тампонаду бронхов.

Так называемые механические оперативные вмешательства редко выполняют при крупных опухолях трахеи и бронхов в качестве радикального вида лечения. У отдельных больных успешное удаление крупных новообразований достигается путем использования специальных приемов (срезание ткани стальной петлей для полипэктомии или осторожное отслаивание опухоли от бронхиальной стенки тубусом бронхоскопа).

Бужирование чаще применяется для лечения рубцовых стенозов трахеи и главных бронхов. Лечебной бронхоскопии с бужированием предшествует диагностическая бронхофиброскопия, во время которой определяются вид и степень стеноза, его протяженность, исключается неопластический процесс.

Наиболее благоприятные условия для бужирования создаются во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом.

Расширение стенозированных дыхательных путей осуществляют тубусом бронхоскопа или специальными бужами. Самым ответственным моментом является первоначальное продвижение тубуса бронхоскопа или дилататора через участок стеноза. Для предупреждения разрыва трахеобронхиальной стенки диаметр тубуса бронхоскопа не должен превышать диаметр дыхательных путей в месте стеноза более чем на 2 мм. Бронхоскопическую трубку целесообразно вводить вращательно-поступательными движениями, которые оказывают более щадящее воздействие на ткани, чем прямое продвижение инструмента. Прилагать усилие можно только в случае уверенности, что тубус бронхоскопа двигается точно через просвет суженного бронха, а не смещается в сторону от него. Визуальный контроль через бронхоскопическую трубку в момент бужирования обеспечивает придание ей правильного направления.

После проведения через участок стеноза бронхоскоп извлекают и бужирование повторяют бронхоскопической трубкой большего диаметра. Для рассечения очень плотной рубцовой ткани при стенозах мембранозного типа, не поддающихся бужированию, нашли применение специальные длинные ножи.

Бужирование у большинства больных позволяет быстро устранить рубцовый стеноз трахеи и бронхов, ликвидировать вентиляционные нарушения. Однако стойкое восстановление нормальной проходимости дыхательных путей достигается редко. Как правило, через 3-6 нед или ранее наблюдается рецидив стеноза, требующий повторных лечебных манипуляций.

До внедрения в клиническую практику криохирургических и лазерных эндоскопических вмешательств бужирование было одним из ведущих бронхоскопических методов лечения стенозов трахеи и бронхов. В последние годы оно стало применяться реже и служит в основном вспомогательной лечебной процедурой при подготовке к другим видам эндобронхиальной хирургии.

Бронхоскопическое бужирование, выполняемое без строгого соблюдения методических требований, может осложниться разрывом или перфорацией трахеобронхиальных стенок, а также кровотечением.

Эндоскопические электрохирургические вмешательства выполняются с помощью двух основных методик: электроэксцизии опухоли диатермической петлей и электрокоагуляции ткани одиночным электродом - электроножом.

К аппаратуре относится электрохирургический блок с источником питания, генерирующим высокочастотный диатермический ток в непрерывном режиме резания или в.прерывистом режиме коагуляции, а также в смешанном режиме. К этому блоку присоединяют два электрода: пассивный - металлическую пластину с большой контактной поверхностью, прикрепляемую к бедру или голени больного, и активный - один из эндоскопических инструментов (диатермическая петля или электронож).

В соответствии с соотношением площадей контактных поверхностей электродов мощность тока ничтожно мала в зоне пассивного электрода и очень высока в области активного электрода. Теплообразование, возникающее при взаимодействии активного электрода с тканью, достаточно для ее рассечения или деструкции.

Бронхоскопические электрохирургические вмешательства производят во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом или во время бронхофиброскопии под местной анестезией. Диатермическую петлю вводят эндобронхиально внутри фторо-пластового катетера через инструментальный канал бронхофиброскопа. При бронхоскопии жестким бронхоскопом с этой целью может быть применен также специальный направитель, совмещенный с оптическим телескопом.

Диатермическую петлю набрасывают на новообразование трахеи или бронхов, подводят под его основание и затягивают. Затем на фоне действия диатермического тока петлю медленно втягивают в катетер и осуществляют электроэксцизию опухоли.

При слишком быстром втягивании диатермической петли в катетер может наступить механическое пересечение основания опухоли без электрокоагуляции, сопровождающееся кровотечением.

В зависимости от размеров новообразования продолжительность электроэксцизии варьирует от 3 до 80 с. Извлечение опухоли из трахеобронхиального дерева осуществляют с помощью щипцов для удаления инородных тел бронхов. Если размеры опухоли превышают диаметр тубуса жесткого бронхоскопа, то после захватывания щипцами ее извлекают вместе с бронхоскопом.

Удаление опухоли трахеи и бронхов может быть достигнуто в результате как однократного, так и повторного электроиссечения ткани диатермической петлей. Одномоментное удаление возможно при расположении опухоли в трахее или одном из бронхиальных стволов. При распространении на две и более бронхиальные ветви опухоль удаляют по частям. Применение вмешательств с помощью диатермической петли ограничено в основном невозможностью ее подведения под основание опухоли. Такая ситуация может возникнуть при опухоли на широком основании и инвазивном ее росте, плотной обтурации опухолью просвета бронха, расположении новообразования в труднодоступных сегментарных ветвях.

Возможности электрохирургических оперативных вмешательств с помощью электроножа ниже, чем при использовании диатермической петли. Электродеструкция крупных новообразований требует многочисленных воздействий на протяжении многократных бронхоскопий. Этот метод чаще применяется для электрокоагуляции грануляционных разрастаний, кровоточащих участков бронхиальных стенок, слизистой оболочки бронхиальных свищей и значительно реже используется для восстановления проходимости дыхательных путей при неоперабельных новообразованиях [Овчинников А. А., Филиппов М. В., 1984].

Криохирургические оперативные вмешательства выполняют путем воздействия на ткани сверхнизкой температуры (-160-180 °С). Криовоздействие через бронхоскоп осуществляют специальным криозондом диаметром около 5 мм, длиной 50-55 см. Охлаждения до сверхнизких температур достигают жидким азотом, циркулирующим внутри криозонда по системе тонких трубок. Сверхнизкая температура создается только на концевой части криоинструмента; остальная поверхность криозонда не подвергается существенному охлаждению благодаря вакуумной термоизоляции.

Криохирургические вмешательства выполняются во время бронхоскопии жестким бронхоскопом.

Криозонд проводят в трахеобронхиальное дерево через бронхоскопическую трубку. После соприкосновения наконечника с патологическим образованием трахеи или бронхов в криоинструмент подается жидкий азот и осуществляется замораживание ткани до -160 °С. Продолжительность однократного криовоздействия 1-3 мин. Затем подача жидкого азота прекращается и наступает оттаивание крионаконечника и замороженной ткани. После этого криозонд может быть извлечен или перемещен на другой участок ткани.

Объем замороженной ткани зависит от продолжительности криовоздействия. При значительных размерах патологического образования криоаппликацию на различных участках ткани повторяют несколько раз во время одной процедуры.

Замораживание ткани сопровождается ее некрозом с последующим отторжением и регенерационным процессом. В результате криовоздействия достигается уменьшение размеров патологических образований вплоть до полного обратного развития.

В клинической практике нашли применение два варианта криохирургических вмешательств: криодеструкция, при которой осуществляется только замораживание ткани, и криорезекция, включающая криовоздействие с последующим механическим удалением некротизированной ткани биопсийными щипцами или другим инструментарием.

Эндобронхиальное криохирургическое вмешательство проводится для частичного удаления неоперабельных опухолей трахеи и бронхов с восстановлением проходимости дыхательных путей, а также с целью лечения рубцовых стенозов трахеи, ларинго-трахеального папилломатоза [Русаков М. А., 1981; Sanderson D. et al„ 1981].

К осложнениям криодеструкции относятся усиление степени стенозирования трахеи и бронхов вследствие отека ткани в зоне криовоздействия, кровотечение.

Бронхологическое применение высокоэнергетических лазеров позволило разработать принципиально новый вид эндобронхиальной хирургии - бесконтактные оперативные вмешательства, при которых разрушение’ патологических образований трахеи и бронхов происходит под воздействием лазерного излучения.

Внедрение эндобронхиальной лазерной хирургии в клиническую практику стало возможным после того, как были сконструированы специальные световоды и фокусирующие системы, обеспечивающие передачу к месту воздействия излучения высокой плотности мощности.

При бронхоскопических оперативных вмешательствах применяются два основных типа лазеров: СОг-лазер и неодимовый иттрий-алюминиево-гранатовый (ИАГ) лазер. С целью передачи излучения С02 лазера используются ригидные световоды, поэтому его применение ограничивается бронхоскопией жестким бронхоскопом. Более универсальны эндоскопические лазерные установки с неоди-мовым ИАГ-лазером, луч которого передается по гибкому волоконному световоду.

Лазерные оперативные вмешательства с помошью неодимового ИАГ-лазера мощностью 100-120 Вт выполняют во время как бронхофиброскопии под местной анестезией, так и бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом. Использование моноволоконных кварцевых световодов диаметром 0,5 мм позволяет создавать в пятне излучения диаметром 1 -1,5 мм плотность мощности до 100 Вт/мм2.

Волоконный световод вмонтирован во фторопластовый катетер диаметром около 2 мм с сохранением пространства для подачи сжатого воздуха.

Излучение неодимового ИАГ-лазера с длиной волны 1060 нм находится в инфракрасной части спектра и не воспринимается глазом. Для наведения лазерного излучения в эндоскопическую лазерную установку включен низкоэнергетический гелий-неоновый лазер с длиной волны 630 нм, придающий лучу окраску красного цвета. Луч гелий-неонового лазера проецируется на трахеобронхиальные стенки в виде красного пятна диаметром около 1 мм.

При бронхофиброскопической методике катетер с моноволоконным световодом вводят в трахеобронхиальное дерево через инструментальный канал бронхофиброскопа. Волоконный световод устанавливают на расстоянии около 0,5 см от патологического образования трахеи или бронхов. Ориентируясь на расположение красного пятна луча гелий-неонового лазера, выбирают место воздействйя. Лазерную фотокоагуляцию осуществляют под непрерывным визуальным контролем. Излучение неодимового ИАГ-лазера подается сериями импульсов (5-6) с кратковременными перерывами между сериями.

Общая продолжительность воздействия зависит от размеров патологического образования. В течение одной процедуры может потребоваться применение 200 и более импульсов. Изменение направления лазерного луча с целью фотокоагуляции различных участков ткани осуществляется путем изгиба дистального конца бронхофиброскопа. В момент лазерного вмешательства дистальный конец световода подвергают обдуву сжатым воздухом с целью защиты от продуктов, образовавшихся при взаимодействии с тканями.

Под воздействием излучения неодимового ИАГ-лазера в ткани образуются три зоны, различающиеся по повышению температуры и характеру повреждения клеток. В первой зоне температура возрастает до 900-1000 °С, что вызывает испарение и извержение частиц ткани, образование аморфной массы коагулированных клеток. Вторая зона характеризуется повышением температуры до 300-400 °С, испарением части тканевой жидкости с развитием многочисленных полостей, выстланных сжатыми и деформированными клетками. В третьей зоне ткани, где температура достигает 70-200 °С, происходит коагуляционный некроз без парообразования. Из-за кратковременности лазерного импульса мгновенно выделяющееся тепло не успевает распространиться за пределы зоны облучения и в отличие от других термических поражений ожоги под воздействием импульсов лазеров имеют резкую границу между пораженной и окружающей интактной тканью [Гамалея Н. Ф., 1981]. Очевидно, поэтому лазерные оперативные вмешательства сопровождаются незначительной реакцией тканей, окружающих зону фотокоагуляции.

Эндоскопически лазерная фотокоагуляция проявляется возникновением кратерообразных углублений ткани с белесоватой или коричневатой поверхностью. В течение одного импульса коагулируется около 3 мм2 ткани. Одновременно происходит выделение дыма, выходящего при выдохе из дыхательных путей. При многократном импульсном лазерном воздействии наступает обугливание (карбонизация) ткани.

Бронхоскопические лазерные оперативные вмешательства зарекомендовали себя как эффективный способ лечения новообразований трахеи и бронхов. При доброкачественных опухолях лазерная фотокоагуляция позволяет полностью удалить новообразование с эндобронхиальным ростом и является радикальным видом лечения.

При злокачественных новообразованиях эндоскопическое воздействие высокоэнергетическим лазером обычно используют в качестве паллиативного вмешательства в случаях наличия противопоказаний к трансторакальному хирургическому лечению для удаления эндобронхиальной части опухоли и восстановления проходимости дыхательных путей. С помощью лазерной фотокоагуляции полной деструкции опухоли можно достигнуть лишь на стадии неинвазивного роста бронхогенного рака.

Эндобронхиальное лазерное воздействие позволяет разрушить не только опухолевую, но и рубцовую ткань и устранить рубцовый стеноз трахеи и бронхов. Лазерные вмешательства наиболее эффективны при рубцовых стенозах протяженностью не более 1 см.

Бронхоскопическая лазерная фотокоагуляция позволяет ликвидировать кровоточащие образования трахеи и бронхов, грануляционные и папилломатозные разрастания, а также некоторые другие виды патологии.

Осложнения при бронхоскопических лазерных вмешательствах (перфорация стенки трахеи или бронха, кровотечение, асфиксия, остановка сердца) встречаются редко. Осложнения с летальным исходом развиваются в основном у больных с неоперабельными злокачественными новообразованиями, находящихся в тяжелом состоянии, и встречаются с частотой до 0,3 % .

Лечебная торакоскопия. Применяется с целью санации плевральной полости и для выполнения различных эндоплевральных оперативных вмешательств. Наряду с инструментарием, используемым при диагностической торакоскопии, для лечебных эндоплевральных манипуляций применяют специальный операционный торакоскоп, в котором тубус совмещен с оптическим телескопом и имеет инструментальный канал.

Основными показаниями к торакоскопической санации плевральной полости является острая и хроническая эмпиема плевры.

Лечебную торакоскопию обычно выполняют под наркозом, но в случае отсутствия выраженной дыхательной недостаточности она может быть произведена и под местной анестезией.

Место торакоцентеза зависит от расположения полости эмпиемы и устанавливается предварительно на основании рентгенологических данных. После введения торакоскопа производят визуальную оценку состояния плевральной полости, выявляют внутриплевральные сращения, наложения фибрина, признаки бронхоплевральных свищей, оценивают степень коллапса легкого. Санация полости эмпиемы включает аспирацию гнойного содержимого, удаление фибринозных и гнойно-некротических налетов, разрушение рыхлых сращений, промывание антисептическим раствором.

Возможности эндоплевральных лечебных вмешательств расширяются при одновременном введении в плевральную полость через дополнительное торакоцентезное отверстие второго тубуса торакоскопа, предназначенного для эндоскопических инструментов или оптических телескопов. Для удаления гнойно-фиброзных наложений и разъединения сращений используют специальные зонды и щипцы, с этой же целью, а также для промывания полости эмпиемы - ультразвуковую аппаратуру [Кабанов А. Н., Ситко Л. А., 1985]. Лечебную торакоскопию завершают введением через торакоскоп резиновой дренажной трубки.

К разновидностям санационной торакоскопии относится лечебная торакоабсцессоскопия. Этот метод применяется при крупных абсцессах легких с секвестрацией легочной ткани.

Место торакоцентеза располагается над центром полости распада, а при наличии жидкого содержимого - на 1-2 см выше его уровня. После, контрольной пункции абсцесса в намеченной точке иглу не извлекают; она служит ориентиром для введения рядом с ней троакара. После осмотра полости абсцесса и аспирации жидкого содержимого осторожно удаляют секвестрированную некротическую легочную ткань и сгустки фибрина. Возникающее при этом небольшое кровотечение останавливают электрокоагуляцией. Процедуру завершают промыванием полости распада антисептическим раствором и торакоскопическим дренированием.

Торакоабцессоскопия позволяет ликвидировать явления интоксикации и ускоряет заживление очага деструкции в легком.

Лечебную торакоскопию используют для санации плевральной полости при травматическом гемотораксе, производя удаление как несвернувшейся крови, так и свертков ее [Авилова О. М. и др., 1986].

К первым торакоскопическим оперативным вмешательствам относится торакоакустика - пережигание плевральных сращений у больных туберкулезом легких, внедренное Якобеусом в 1913 г. В последние годы оперативную торакоскопию наиболее часто выполняют при спонтанном пневмотораксе с целью разрушения булл и сращений, являющихся причиной пневмоторакса и препятствующих расправлению легкого. В качестве торакоскопического операционного инструментария используют диатермокоагулятор и лазерную аппаратуру.

При электрохирургических вмешательствах диатермокоагулятор вводят через инструментальный канал операционного торакоскопа или с помощью дополнительно торакоцентеза. После подведения диатермокоагулятора к поверхности буллы осуществляют электродеструкцию ее стенки с коагуляцией основания. Аналогичным путем разрушают одиночные сращения между париетальной и висцеральной плеврой.

Для лазерных оперативных вмешательств, как и при бронхоскопии, используют неодимовый ИАГ-лазер с гибким моноволоконным световодом. В плевральную полость световод проводят с помощью специального направителя. С этой целью могут быть использованы также фиброэндоскопы. Направляя луч лазера на буллезное образование, производят фотокоагуляцию его стенки и основания.

Диатермическую и лазерную коагуляцию применяют при хорошо доступных средних и мелких буллах, стремясь к облитерации их. Преимуществами лазерной фотокоагуляции являются бесконтактное разрушение булл, возможность точной дозировки энергии и постоянного визуального контроля за процессом коагуляции.

Для образования сращений в плевральной полости и предупреждения рецидива заболевания может быть применено эндоплевральное распыление талька или других химических веществ.

К более редким торакоскопическим оперативным вмешательствам относятся париетальная плеврэктомия, внутриплевральная симпатэктомия и ваготомия, удаление инородных тел и др.

Применяют препараты:

Санация бронхиального дерева наиболее эффективна в лечении . Методы санации принято делить на пассивные, к которым относят постуральный (позиционный) дренаж и отхаркивающие средства, и активные, заключающиеся в аспирации содержимого бронхов, их промывании (лаваж) и последующем введении в бронхи лекарственных веществ [Стручков В. И., Лохвицкий С. В., 1972].

Обязательным надо считать позиционный дренаж бронхиального дерева, который проводится в строгом соответствии с локализацией . При базальных бронхоэктазах секрет из бронхов удаляют путем перевешивания туловища через край кровати или значительного поднятия ножного конца кровати; при локализации бронхоэктазов в IV и V сегментах - лежа на спине с опущенным головным концом кровати и с подложенной под больной бок подушкой .

Постуральный дренаж обязательно проводят больным бронхоэктатической болезнью по крайней мере 2 раза в день (утром после сна и вечером перед сном). Во время же обострения болезни дренаж следует использовать многократно, каждый раз до возможно полного освобождения бронхиального дерева от содержимого.

Эффект постурального дренажа может быть усилен назначением отхаркивающих средств: 3% раствора йодида калия, настоя травы термопсиса (0,6: 180,0) по 1 столовой ложке каждого раствора 4 - 6 - 8 раз в день; бромгексина или бисольвона в таблетках по 4 - 8 мг 3 раза в день или в виде ингаляций; муковиста в виде аэрозоля по 3 мл 20% раствора и др. Показано, что постуральный дренаж в сочетании с вибромассажем и откашливанием у больных хроническими заболеваниями легких повышает показатель форсированной жизненной емкости легких .

Активные методы санации бронхов. Подчеркивая значение пассивных методов санации бронхиального дерева, следует, однако, отметить, что выраженное угнетение рефлекса самоочищения бронхов у больных ХНЗЛ и особенно бронхоэктатической болезнью не позволяет рассчитывать на эффективное освобождение бронхиального дерева от его содержимого путем применения лишь этих методов.

Решающее значение приобрели активные, своего рода инвазивные методы дренирования бронхоэктазов и пораженных бронхов - микродренирование трахеи и бронхов (чрескожная микротрахеостома), бронхоскопический дренаж, лаваж бронхиального дерева, эндобронхиальная направленная катетеризация под рентгенологическим контролем с аспирацией содержимого бронхоэктазов и последующим введением антимикробных, противовоспалительных, бронхолитических и других лекарственных средств.

К санации бронхиального дерева нужно подходить комплексно. Существует несколько методов санации:

· Лечебная бронхоскопия.

· Эндобронхиальное вливание.

· Ингаляционный.

· Постуральный дренаж.

1. Бронхоскопия с лечебной целью. Лечебная бронхоскопия на современном этапе является основным методом санации бронхиального дерева, так как имеет ряд преимуществ перед другими методами. В ходе процедуры последовательно осуществляются аспирация бронхиального содержимого и введение лекарственных веществ, оказывающих непосредственное воздействие на микрофлору бронхов и разжижающих мокроту, облегчая ее отхаркивание. Бронхоскопию с лечебной целью следует проводить лишь в тех случаях, когда консервативная терапия оказывается малоэффективной, т. е. на той стадии лечения, когда продукция слизи превышает эвакуаторные возможности дыхательных путей, что ведет к обтурации бронхов, а затем к инфицированию и нагноению в них.

Лечебная бронхоскопия может быть выполнена фибробронхоскопом (рис. 1) как под местным, так и под общим обезболиванием. Для санации бронхиального дерева у взрослых чаще применяют фибробронхоскопию (ФБС) под местной анестезией. Она проводится в бронхоскопическом кабинете, но может быть выполнена и в других помещениях, в том числе при тяжелом состоянии больного непосредственно в палате.

Рис. 1. Бронхоскоп

Осмотр и санацию бронхов обычно начинают с той стороны, где патология предположительно менее выражена, и завершают зоной основного поражения. Туалет бронхиального дерева включает тщательную последовательную аспирацию содержимого из долевых и сегментарных ветвей, промывание их индифферентным или антисептическим раствором, введение лекарственных веществ.

Для санации одиночных полостей распада или ограниченных очагов воспаления в легком может быть использована лечебная катетеризация бронхов , выполняемая во время бронхоскопии или как самостоятельный метод. Под контролем ФБС можно производить микротрахеоцентез, в ходе которого тонкий катетер вводится в трахеобронхиальное дерево чрескожно для длительной и частой (2-4 раза в сутки) инстилляции лекарственных веществ.

Выбор лекарственных средств для эндобронхиального введения зависит от характера воспалительного процесса, их можно разделить на следующие группы :

· Антимикробные препараты . Эндобронхиальное введение способствует созданию высоких концентраций антибиотика непосредственно в очаге поражения при сравнительно низком содержании его в крови, что уменьшает возможность развития токсических реакций. При этом другие пути введения сохраняют свое значение, то есть используется комбинированное введение антибиотиков с учетом совместимости препаратов.

До начала лечения проводится забор мокроты для бактериологического исследования, затем – аспирация секрета с последующим промыванием бронхов. Выбор антибиотика зависит от чувствительности микробной флоры. Для лечебной бронхоскопии применяют гентамицин по 160 мг, цепорин по 0,5 г, линкомицин по 0,5 г, полимиксин М по 0,25 г и другие антибиотики. Эти же антибиотики в указанных выше дозах используются при других способах эндобронхиального введения.

При тяжелом течении заболевания, осложненного бронхоэктазами, и при наличии гнойного бронхита наиболее эффективен комплексный метод санации бронхиального дерева. При этом периодически (примерно один раз в неделю) проводят бронхоскопическую санацию, а в перерывах между бронхоскопиями через день вводят антибиотик эндотрахеально через резиновый катетер. Ингаляционную терапию проводят в дни, свободные от бронхоскопий и эндобронхиальных санаций через катетер. Число бронхоскопий при различных заболеваниях колеблется от 3-4 до 11-12.

· Антисептические средства. Помимо антибиотиков для эндобронхиального введения в качестве основного действующего вещества используют 5-10 мл 1% раствора диоксидина, раствора фурацилина 1:5000, 0,1% раствора фурагина. Кроме того, антисептические растворы применяют для промывания бронхов перед введением других лекарственных препаратов. Данная процедура проводится путем повторных инстилляций по 10-15 мл с последующей аспирацией. Общее количество вводимой жидкости может колебаться от 40 до 100 мл в зависимости от количества мокроты.

· Муколитики используют для понижения вязкости бронхиального секрета. Для эндобронхиального введения применяют трипсин, химотрипсин, РНКазу, ДНКазу в количестве 25-50 ЕД. Перед инстилляцией ферменты растворяют в 3 мл изотонического раствора натрия хлорида. Протеолитические ферменты обладают также противовоспалительными свойствами, повышают чувствительность микрофлоры к антибиотикам.

Выраженное муколитическое влияние оказывает ацетилцистеин. Эндобронхиально вводят 5-10% раствор в количестве 3-10 мл.

· Бронхолитики. В настоящее время применяют три основные группы бронхолитиков: адреномиметики, холинолитики и метилксантины. Эндобронхиально чаще инстиллируют 1 мл 5% раствора эфедрина, 5-10 мл 2,4% раствора эуфилина.

2. Эндобронхиальное введение с помощью резинового катетера (катетера Нелатона).

Этот метод особенно рекомендуется при осложнении заболевания бронхоэктазами и наличии распространенного гнойного бронхита . Процедура проводится под местной анестезией. Первый этап - в положении сидя проводится анестезия носа, носоглотки (до голосовой щели) 0,5% раствором дикаина. При этом больной должен правильно дышать: вдох совершать носом, выдох ртом. При вдохе в ноздрю, имеющую лучшую проходимость, вначале закапывают, а затем вливают полной пипеткой 0,5% раствор дикаина, который равномерно распределяется по слизистой оболочке и достигает голосовой щели. Через 5-7 мин, когда наступает анестезия (это определяется по ощущению неловкости в горле), катетер через соответствующую ноздрю продвигают до голосовой щели, а затем на глубоком вдохе проталкивают его через голосовую щель в трахею. Это определяется по появлению осиплости голоса. В трахею вливают 3-5 мл смеси, состоящей из 1-2 мл 0,5% раствора дикаина и 2-3 мл 10% раствора новокаина. После этого кашель проходит. Вначале проводят промывание бронхов, для этого через катетер вводят 10-12 мл физиологического раствора или 3 % раствор соды, раствора фурацилина 1:5000, 0,1 % раствора фурагина. После этого производят аспирацию бронхиального содержимого при помощи электроотсоса. Такое промывание бронхов выполняют до 8-10 раз и более. При двустороннем процессе промывание бронхов проводят последовательно с обеих сторон. Процедуру завершают заливкой антибиотика. Введение повторяют через день, на курс лечения – 8-12 процедур.

3. Ингаляционный метод. Предпочтительной ингаляционной техникой является использование небулайзера (рис. 2): не требуется выполнения форсированных инспираторных маневров, обеспечивается хорошая координация вдоха больного с высвобождением препарата, достигается более значительное поступление лекарственного вещества в дыхательные пути . Кроме того, более длительная ингаляция при применении небулайзера (около 10-12 мин) гарантирует бόльшую эффективность препарата, так как успешнее преодолевается барьер, создаваемый мокротой, между лекарственным веществом и рецепторами. Сочетание небулайзера и компрессора имеет ряд преимуществ перед ультразвуковым ингалятором. При использовании небулайзера достигается лучшая дисперсия, при которой ингалируемый препарат проникает в более мелкие дыхательные пути; кроме того, ультразвуковой ингалятор несколько нагревает препарат, что может изменить свойства антибиотика.

Рис. 2. Небулайзер

Для ингаляций применяют антибиотики, муколитики, бронхолитики, антисептики и др. Ингаляции аэрозолей антибиотиков проводят 2 раза в сутки в течение 10-12 дней. Чаще используются ежедневные ингаляции гентамицина в дозе 80-160 мг/сут и специальной бессульфатной формы тобрамицина в больших дозах (300 мг 2 раза в сутки), что позволяет достичь максимальных концентраций препарата в мокроте.

В качестве муколитиков обычно используют N-ацетилцистеин (АЦЦ, мукосолвин) и амброксол (лазолван). АЦЦ обычно назначают по 300-400 мг 2-3 раза в сутки, амброксол - по 30 мг 3 раза в сутки.

Небулайзеры дают возможность ингалировать одномоментно большие дозы бронхолитиков. Обычно применяют β 2 -агонисты и холинолитики. Из β 2 -агонистов лучше изучены эффекты сальбутамола (вентолина) и фенотерола (беротека). Однократная доза сальбутамола для небулизации 2,5-5 мг, фенотерола – 0,5-0,75 мг, кратность ингаляций до 4 раз в сутки. Единственным доступным антихолинергическим препаратом для небулизации на сегодняшний день остается ипратропиума бромид (атровент). Обычная ингаляционная доза при назначении препарата через небулайзер – 0,5 мг каждые 6-8 часов.

4. Постуральный (позиционный) дренаж. При проведении постурального дренажа больной принимает такое положение, которое обеспечивает отделение секрета из поражённых бронхов. Так, при наиболее частой локализации бронхоэктазов в базальных сегментах больной в положении на животе свешивает с кровати головной конец туловища под углом 40-45 %. Эффективность постурального дренажа значительно возрастает при одновременном назначении отхаркивающих средств и муколитиков, дыхательной гимнастики и массажа грудной клетки. Процедура проводится не менее 2-3 раз в сутки .

Альтернативой традиционному постуральному дренажу является недавно предложенный метод высокочастотных компрессий (осцилляций) грудной клетки с помощью специальных аппаратов.

Литература

1. Авдеев С. Н. Использование небулайзеров в клинической практике //Русский медицинский журнал. - 2001. - №5. - С. 189-196.

2. Саперов В. Н. Практическая пульмонология: Учеб. пособие / В. Н. Саперов, И. И. Андреева, Г. Г. Мусалимова. - Чебоксары: Изд-во Чуваш. ун-та, 2006. - 658 с.

3. Смирнова М. С., Кузнецов А. Н., Меньков Н. В. Ингаляционная терапия в пульмонологии: Учебное пособие. - Нижний Новгород: Из-во Нижегородской государственной медицинской академии, 2003. 102 с.

.

В условиях медицинской организации и на дому встречаются пациенты, у которых мокрота и слизь перекрывают путь движения воздуха, необходимого для дыхания. В ряде случаев эти секреты могут скапливаться в носу, ротовой полости, гортани и трахее.

Если эвакуация секрета из ротовой полости может быть выполнена путём механического опорожнения дыхательных путей салфеткой, которая надета на палец или шпатель, то произвести аналогичное механическое опорожнение носа, гортани и трахеи практически невозможно.

Особенно эта проблема актуальна для пациентов с перенесёнными инсультами и нарушением функции глотания, с иной неврологической патологией, после ряда хирургических вмешательств. В этой связи наиболее правильным будет использование приборов, которые аспирируют (отсасывают) мокроту.

В настоящее время спектр таких приборов достаточно велик. Одним из примеров являются аспираторы серии АТМОС (ATMOS), которые могут использоваться в медицинской организации и дома. Эти аппараты обладают небольшими габаритными размерами и массой, способностью работать от сети или аккумулятора, высокой скоростью аспирации, колеблющейся от 16 до 25 л/мин.

Проведение процедуры аспирации требует специальной и довольно простой подготовки медицинской сестры и/или родственников больного. Целесообразно первые процедуры аспирации у конкретного больного выполнять не одному, а двум медицинским работникам, чтобы иметь возможность предупредить больного о возможных неприятных ощущениях, поддержать и успокоить его, дать возможность адаптироваться.

При необходимости один медицинский работник сможет проводить процедуру аспирации, а второй — измерит пульс, АД, поддержит больного во время манипуляции и т.д.

Причинными факторами, ведущими к увеличению популяции больных с трахеостомами, являются сочетанные травмы полых органов шеи, постинтубационные стенозы гортани и трахеи, различные оперативные вмешательства на органах шеи, злокачественные новообразования верхних дыхательных путей, тяжелые соматические заболевания, нарушающие жизненно важные функции – дыхания и пищепроведения, требующие протезирования дыхательных и пищеварительных путей.

Несмотря на успехи гортаннотрахеальной хирургии, значительное число больных остаются вынуждены использовать трахеостому постоянно из-за невозможности или неэффективности хирургического восстановительного лечения.

Наличие трахеостомы является источником опасности для больного, а при отсутствии надлежащего ухода и медицинского мониторинга может представлять прямую угрозу жизни. У трахеостомированных больных наряду с аспирациями в ряде случаев требуются периодические замены трахеостомических трубок, их очистка.

Назотрахеальная и оротрахеальная аспирация

Цель : освобождение носа, рта и трахеи больного от слизи, мокроты, препятствующих нормальному дыханию.

Показания : нарушение эвакуации слизи и мокроты из дыхательных путей.

Возможные осложнения

Потребуется : вакуум- отсос (аспиратор), стерильный отсасывающий катетер, перчатки (стерильная для руки, которая манипулирует со стерильным катетером), пакет для мусора, защитная маска, защитные очки, одноразовый фартук, халат, раствор натрия хлорида 0,9%, стерильный гель- смазка (например, «Катеджель»), мешок для мусора, при необходимости небулайзер для последующей ингаляции.

• Больной располагается в положении «сидя» или «полусидя» (положение полу-Фаулера), ему объясняется суть проводимой процедуры, даются инструкции о том, как себя вести, обращается внимание, что каждая аспирация занимает не более 10-15 сек и не опасна. При необходимости на время могут быть удалены съемные зубные протезы.

• Попросить больного сделать 5 глубоких вдохов, при возможности — с использованием кислорода.

• На кончик катетера нужно нанести гель-смазку для улучшения прохождения катетера в нос и рот пациента, на вдохе ввести катетер в рот, а позднее — в нос пациента (при затруднении носового дыхания и заполненном слизью рте больной может испугаться, что задохнётся, потому начинают аспирации с полости рта) на глубину не более расстояния от кончика носа до мочки уха этого пациента и включить аспиратор.

• Извлекать катетер с использованием вращающих движений не прекращая аспирации, стараться при этом не касаться нёба, язычка, языка пациента, чтобы не вызвать тошноту и рвоту.

• Проведите аускультацию лёгких, чтобы убедиться, что дыхание проводится во все отделы лёгких. Если у больного с обструктивным заболеванием лёгких появились сухие хрипы, то можно рекомендовать провести ингаляцию через небулайзер раствора бронхолитика.

Трахеостомная аспирация

Цель : освобождение нижней части гортани и трахеи больного с трахеостомой от слизи, мокроты, препятствующих нормальному дыханию.

Показания : нарушение эвакуации слизи и мокроты из дыхательных путей у трахеостомированного больного.

Возможные осложнения : кровотечения из носа или носоглотки, повреждение трахеи, гипоксия, сердечная аритмия (в том числе бради- или тахикардия), удушье, тошнота, рвота, кашель, попадание инфекции в дыхательные пути.

Потребуется : вакуум-отсос (аспиратор), стерильный отсасывающий катетер, перчатки (стерильная для руки, которая манипулирует со стерильным катетером), пакет для мусора, защитная маска, защитные очки, одноразовый фартук, халат, раствор натрия хлорида 0,9%, стерильный гель-смазка (например, «Катеджель»), мешок для мусора, при необходимости небулайзер для последующей ингаляции и манометр для контроля воздуха в манжете трахеостомической трубки.

Алгоритм выполнения манипуляции

• Больной располагается в положении «сидя» или «полусидя» (положение полу-Фаулера), ему объясняется суть проводимой процедуры, даются инструкции о том, как себя вести, обращается внимание, что каждая аспирация занимает не более 10-15 сек и не опасна.

• Медицинский работник или родственник пациента одевает халат и/или одноразовый фартук, одноразовые перчатки, маску, защитные очки.

• Отсасывающий катетер присоединяется к аспиратору, аспиратор устанавливается на мощность отсоса в 80-120 мм рт. ст. или до 0,4 Бар у взрослых и до 0,2 Бар у детей и подростков.

• Закапать несколько капель 0,9% раствора натрия хлорида в трахеостомическую трубку для разжижения секрета.

• Кончик катетера ввести на глубину не более длины трахеоканюли.
• Извлекать катетер с использованием вращающих движений, не прекращая аспирации.
• При необходимости повторить аспирацию, используя другой катетер, чтобы предупредить распространение инфекции.
• Предложите больному прополоскать рот водой или жидкостью для полоскания полости рта.
• После аспирации промыть систему шлангов раствором антисептика.
• Оцените объём аспирата и запишите в температурный лист или дневник наблюдений за больным.

• Проведите аускультацию лёгких, чтобы убедиться, что дыхание проводится во все отделы лёгких. Если у больного с обструктивным заболеванием лёгких появились сухие хрипы, то можно рекомендовать провести ингаляцию раствора бронхолитика через небулайзер, присоединённый к трахеостомической трубке.

• Снимите одноразовый фартук, маску, перчатки, вымойте руки.

Очистка трахеоканюли

Цель : очистка трахеоканюли от слизи, мокроты, крови для ее дальнейшего использования.

Показания : загрязнение трахеоканюли слизью, мокротой, кровью и иными посторонними компонентами, создающими условия для нарушения движения по ней воздуха.

Возможные осложнения

Потребуется : запасная трахеоканюля (на случай повреждения трахеоканюли, подлежащей замене), ёмкость для очистки, ёршик (щётка) для очистки, антисептическое средство, масло или мазь для трахеостомы, кран с проточной водой.

Алгоритм выполнения манипуляции

• Извлеките трахеоканюлю, используя проточную воду и ёршик удалите поверхностное загрязнение.

• Поместите внутреннюю и внешнюю трахеоканюли в ёмкость с моющим антисептическим раствором, оставьте их на 10 мин.

• Ополосните канюли от моющего раствора под струёй проточной воды.
• Обработайте трахеостому маслом или мазью для обработки трахеостомы.
• Установите канюлю в стому.

• При возникновении кровотечения в результате травматизации трахеи за счёт неаккуратных манипуляций целесообразно проконсультировать больного у оториноларинголога. Если кровотечение обильное, то до осмотра специалиста больной укладывается на живот с опущенным головным концом, чтобы препятствовать попаданию крови в бронхиальное дерево.

• При возникновении удушья во время установки трахеостомы целесообразно попросить больного откашляться, чтобы устранить явление закупорки дыхательных путей, если откашливание не приносит позитивного результата, то нужно извлечь внутреннюю канюлю, чтобы проверить её проходимость.

• Вымойте руки.

Замена трахеоканюли

Цель : смена трахеоканюли, которая пришла в негодность.

Показания : непригодность трахеоканюли для дальнейшего использования.

Возможные осложнения : кровотечения из трахеи, повреждение трахеи, закупорка трахеостомической трубки и развитие гипоксии.

Потребуется : трахеоканюля, фиксирующая повязка, стерильные трахеостомические салфетки (1-, 2- или 3-хслойные), шприц объёмом 10 мл, масло или мазь для трахеостомы, 0,9% раствор натрия хлорида, марлевые салфетки.

Алгоритм выполнения манипуляции

• Больной располагается в положении «сидя» или «полусидя» (положение полу-Фаулера), ему объясняется суть проводимой процедуры, даются инструкции о том, как себя вести.

• На первом этапе для обеспечения проходимости дыхательных путей во время смены канюли проводится аспирация дыхательных путей.

• Канюля извлекается. Если она заблокирована, то предпринимаются аккуратные попытки снять блок и извлечь канюлю.

• Трахеостома очищается стерильными салфетками, смоченными в 0,9% растворе натрия хлорида или специальными салфетками для очистки трахеостомы.

• Необходимо проверить надёжность фиксации трахеостомической канюли, чтобы она не выпала из стомы, а была извлечена только при необходимости.

• Для замены канюли под её ушки заводятся стерильные салфетки с Y-образным разрезом. Масло или мазь для обработки трахеостомической трубки располагают на поверхности канюли. Нужно растянуть и удерживать отверстие трахеостомы двумя пальцами, затем ввести канюлю, следуя ее изгибам и соблюдая аккуратность. Закрепить фиксирующие завязки на шее и проверить фиксацию канюли. Фиксирующие канюлю повязки должны быть натянуты между кожей шеи и завязками так, чтобы можно было ввести 1 палец.

• Вымойте руки.

Таким образом, проведение назотрахеальной, оротрахеальной и трахеостомной аспирации с помощью специальных приборов, а также проведение ухода за трахеостомой являются неотъемлемыми навыками медицинской сестры, которым она может обучить родственников больного, осуществляющим уход на дома.

Последовательная разработка прямых методов исследования гортани, трахеи и бронхов началась с момента внедрения пря­мой ларингоскопии в 1884 г. Kirstein. На основании углублен­ных анатомических исследований Killian доказал, что бронхи менее ранимы при эндоско­пии, чем мягкие стенки пищевода. Вместе со своими учениками Brunnings и Eicken Killian изобрел бронхоскопи­ческий прибор, который был в дальнейшем усо­вершенствован. Кроме того, ими была разработана техника и методика бронхоскопии (цит. по Еловой М.Я.). Пер­вым бронхоскопическим вмешательством Киллиана было извле­чение инородного тела (куска кости) в 1897 г. В 1904 г. Jackson написал первую монографию о трахеобронхоскопии, в которой он называет Killian отцом бронхоскопии. Термин «бронхо­скопия» также предложил Killian. На основании ли­тературных данных и собственных наблюдений автор подчерки­вает роль бронхоскопии в извлечении инород­ных тел из трахеи и бронхов. В 1911 г. В.Д.Соколов на основа­нии собственных наблюдений привел данные об успешном при­менении бронхоскопии при лечении абсцессов легкого. В 1924-1926 г.г. М.Ф.Цитович, В.К.Трутнев, А.Г.Лихачев и др. также опубликовали работы по применению бронхоскопии с ле­чебной целью при различных заболеваниях бронхов и легких (цит. по Еловой М.М.). Таким образом, бронхоскопия с самого начала своего существования стала важнейшим лечебно- оперативным эндоскопическим методом, и приоритет внедрения бронхоскопии в внутренних болезней принадлежит рус­ским .

Как показал наш многолетний опыт, необходимо проводить лечебные бронхоскопии курсами. Еще в 1956 г. Soulas и Mounier-Kuhn разделили курс лечебной бронхоскопии на 3 этапа. Первый этап - пробное ле­чение, второй этап - лечение для закрепления, третий этап - ле­чение для поддержания.

Самым лучшим из антисептиков признана фурагина калие­вая соль - один из наиболее распространенных препаратов нит- рофуранового ряда. Готовят 0,1% раствор фурагина калиевой соли.

Диоксидин - антисептик, производное хиноксолина, оказывает выраженное антибактериальное действие. Готовят 0,1% или 0,2% раствор диоксидина на 2% растворе гидрокарбоната натрия.

Санирующий раствор готовят непосредственно перед упот­реблением. Перед введением в бронхиальное дерево его обяза­тельно подогревают до температуры 36-37°. На одну санацию используют от 60 до 140 мл й смеси.

Санационную бронхоскопию начинают с удаления содержи­мого из трахеобронхиального дерева с помощью отсоса. После этого промывают наиболее пораженные бронхи раствором ан­тисептика. Одномоментно вводят не более 20 мл санирующей смеси с последующей аспирацией ее с помощью отсоса. Лечеб­ную бронхоскопию заканчивают введением муколитика и/или .

Слизь, вырабатываемая бронхиальными клетками, содержит боль­шое число сульфгидрильных групп, способных формиро­вать связи друг с другом с образованием трехмерной мукоидной структуры. Эти связи, называемые «дисульфидными мостика­ми», очень прочны и могут быть разорваны только восстанови­телями.

В настоящее время при заболеваниях органов дыхания, со­провождающихся образованием вязкой мокроты слизисто-гнойного или гнойного характера, применяются бронхосекретолитические препараты.

Одним из эффективных препаратов этой группы является N-ацетилцистеин (флуимуцил) - это N-ацетиловое производное естественной аминокислоты L-ацетилцистеина.

Флуимуцил - это препарат, оказывающий прямое муколити- ческое действие; он воздействует на образование слизи путем разрыва дисульфидных мостиков макромолекул мукопротеина, присутствующих в бронхиальном секрете. Это фармакологиче­ское действие связано с наличием в молекуле флуимуцила сво­бодной сульфгидрильной группы, делающей его биологически активным препаратом. В результате воздействия флуимуцила образуются молекулы меньшего молекулярного веса, и происхо­дит разжижение слизи, поскольку препарат уменьшает ее вяз­кость.

Воздействие флуимуцила на вязкость и эластичность слизи оценивалась in vitro на материале трахеобронхиального секрета животных, а также в исследованиях больных забо­леваниями легких с применением различных методов. Эти ис­следования показали, что флуимуцил эффективно уменьшает вязкость и эластичность слизи, причем существует взаимосвязь

между дозой препарата и интервалом времени, предшествую­щим реакции. Постепенное повышение концентрации флуиму- цила приводит к более выраженному и быстрому уменьшению вязкости. Исследования с применением муциновых моделей вы­явили постепенное уменьшение вязкости и эластичности слизи при введении возрастающих концентраций флуимуцила.

Активность ресничек эпителия дыхательных путей зависит от степени вязкости секрета, покрывающего эпителий. Оптималь­ная вязкость в сочетании с адекватной подвижностью ресничек способствуют правильной и эффективной элиминации слизи. Исследования, проведенные на животных, показали, что флуи- муцил повышает мукоцилиарную активность. Это благоприят­ное воздействие на мукоцилиарный транспорт объясняется улучшением деятельности ресничек и приводит к более эффек­тивной элиминации слизи и меньшей степени ее адгезии к эпителию.

Лечение флуимуцилом приводит к значительному снижению активности эластазы - как в бронхоальвеолярном секрете, так и в плазме крови - что свидетельствует о способности данного препарата предотвращ ать разрушение легочного эластина, обу­словленное хроническим воспалительным процессом.

Передача окислительно-восстановительных сигналов - это часть основных механизмов воспаления, например, индукции цитокинов, пролиферации, апоптоза и генной регуляции с целью защиты клеток. Оксиданты действуют как медиаторы передачи сигналов. Было показано, что тиолосодержащие восстанавли­вающие агенты, в том числе флуимуцил, подавляют активацию МБкБ, контролирующего клеточные гены, ответственные за внутриклеточные адгезионные молекулы в интактных клетках. Кроме того, было показано, что флуимуцил подавляет экспрес­сию молекулы адгезии-1 клеток сосудов (УСЛМ-1) в эндотели- альных клетках человека.

Увеличивается количество данных, показывающих, что ок- сидативный стресс играет важную роль в развитии различных заболеваний человека. Источник стресса может быть внутрен­ним (например, активированные клетки воспаления, клетки с окислительно-восстановительным циклом ксенобиотиков) или внешним (например, табакокурение).

Флуимуцил может оказывать прямой антиоксидантный эф­фект благодаря тому, что он является носителем свободной ти- ольной группы, способной взаимодействовать с электрофиль- ными группами свободных радикалов кислорода (реактивных кислородных частиц - РКЧ), Взаимодействие с РКЧ приводит к

промежуточному образованию тиольных радикалов; основным клеточным продуктом является дисульфид флуимуцила.

Флуимуцил оказывает непрямое антиоксидантное воздейст­вие, связанное с тем, что он является предшественником глюта- тиона и защищает эпителий дыхательных путей от агрессивного воздействия токсичных веществ, предотвращая, таким образом, повреждения легочной ткани. . Этот трипептид является основным фактором защиты от внутренних токсических агентов (связанных, например, с аэроб­ным дыханием клеток и обменом веществ в фагоцитах) и внеш­них агентов (например, окиси азота и других ком­понентов табачного дыма). Сульфгидрильная группа цистеина оказывает нейтрализующее воздействие на эти агенты.

Токсические агенты вызывают поражения любых тканей, од­нако эпителий бронхов и альвеол легких в связи с его располо­жением, анатомией и физиологией особенно склонен к возник­новению поражений, вызываемых токсическими веществами. Существует ряд заболеваний (острый респираторный дистресс синдром, ХОБЛ, интерстициальные заболевания легких, муковисцидоз, бронхиальная астма), при которых на по­верхности эпителия дыхательных путей присутствует избыток токсических агентов, приводящий к нарушению равновесия ме­жду глютатионом и токсическими агентами в сторону уменьше­ния количества глютатиона. В этих случаях развивается пораже­ние эпителия дыхательных путей, называемое «оксидативным стрессом».

Глютатион синтезируется преимущественно в печени (выполняющей роль депо глютатиона) и в легких, однако он распределяется во всем организме. Синтез осуществляется в ци­топлазме клетки в два отдельных ферментативных этапа. На первом этапе осуществляется соединение глютаминовой кисло­ты и цистеина под воздействием гамма-глютамилцистеин- синтетазы, а на втором этапе - добавление глицина к дипептиду гамма-глютамилцистеину под действием глютатионсинтетазы с образованием глютатиона. Флуимуцил выполняет роль предше­ственника глютатиона, поскольку он легко проникает в клетки и легко подвергается деацилированию с образованием цистеина.

Наличие аминокислот для использования в синтезе глюта­тиона является основным фактором регуляции синтеза глюта­тиона. Цистеин содержится в клетках в меньшем количестве по сравнению с глютаминовой кислотой и с глицином. Таким обра­зом, синтез глютатиона зависит от наличия цистеина. Уровень глютатиона можно повысить путем дополнительного введения цистеина. Однако возможность введения активной формы цис­теина - L-ацетилцистеина - отсутствует из-за низкого уровня всасывания в кишечнике, низкого уровня растворимости в воде и быстрого преобразования в процессе обмена веществ в печени. Эти недостатки преодолеваются при использовании флуимуци- ла, в котором радикал ацетил соединен с аминогруппой. Таким образом, появляется возможность вводить такое количество цистеина, которое нужно для поддержания адекватного уровня глютатиона в легких.

Во время лечебной бронхоскопии применяют 2 мл 5% рас­твора флуимуцила (N-ацетилцистеина), который вводят в конце санации. Действие препарата начинает­ся через 30 мин и сохраняется до 2 - 4 ч. При этом происходит разжижение мокроты, она легче отходит и в большем количестве, чем до санации, поэтому создается впечат­ление о значительном увеличении объема мокроты. На самом деле флуимуцил не стимулирует выработку секрета, а лишь раз­жижает его. Флуимуцил обладает слабым запахом сероводоро­да, поэтому его нужно с осторожностью применять у больных бронхиальной астмой из-за опасности развития бронхоспазма, однако мы за более чем 5-ти летний опыт использования препа­рата не имели подобного осложнения.

Флуимуцил при инстилляциях не следует смешивать с анти­биотиками, так как при этом происходит взаимная инактивация препаратов. Поэтому фирма Zambon выпустила уникальный препарат - флуимуцил антибиотик ИТ, который состоит из ан­тибиотика тиамфеникола и N-ацетилцистеина, он остается среди антибиотиков первого выбора в лечении респираторных инфекций. Антибиотик вводят в конце санационной бронхоско­пии в количестве 500 мг, разведя его предварительно в 5 мл воды для инъекций.

До последнего времени антибиотики инсталлировали в про­свет бронхиального дерева в конце лечебной бронхоскопии, на фоне выраженного кашля, который провоцировался введением санирующего вещества, поэтому антибиотики в большем коли­честве откашливались пациентом, и роль их была невелика. В связи с этим нами разработан и широко внедрен в клиническую практику способ интрабронхиальной регионарной антибиоти- котерапии.

Статью подготовил и отредактировал: врач-хирург