Лабораторные животные. Лабораторные животные, цели и методы их использования в вирусологии Какие виды животных подходит для лабораторных исследований

ГОСТ 33216-2014

Группа Т58

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

РУКОВОДСТВО ПО СОДЕРЖАНИЮ И УХОДУ ЗА ЛАБОРАТОРНЫМИ ЖИВОТНЫМИ

Guidelines for accommodation and care of animals. Species-specific provisions for laboratory rodents and rabbits

МКС 13.020.01

Дата введения 2016-07-01

Предисловие

Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены в ГОСТ 1.0-92 "Межгосударственная система стандартизации. Основные положения" и ГОСТ 1.2-2009 "Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила, рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, применения, обновления и отмены"

Сведения о стандарте

1 РАЗРАБОТАН Некоммерческим партнерством "Объединение специалистов по работе с лабораторными животными" (Rus-LASA)

2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 339 "Безопасность сырья, материалов и веществ"

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 22 декабря 2014 г. N 73-П)

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 9 ноября 2015 г. N 1733-ст межгосударственный стандарт ГОСТ 33216-2014 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 июля 2016 г.

5 Настоящий стандарт соответствует международному документу European Convention for the protection of Vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes (ETS N 123)* (Европейская конвенция о защите позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях (ETS N 123)).
________________
* Доступ к международным и зарубежным документам, упомянутым здесь и далее по тексту, можно получить, перейдя по ссылке на сайт http://shop.cntd.ru . - Примечание изготовителя базы данных.


Перевод с английского языка (en).

Степень соответствия - неэквивалентная (NEQ)

6 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ


Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном информационном указателе "Национальные стандарты", а текст изменений и поправок - в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет

Введение

Введение

Государства - члены Совета Европы приняли решение о том, что их целью является охрана животных, используемых для экспериментальных и других научных целей, которое является гарантией того, что возможные боль, страдание, дистресс или повреждения, имеющие длительные последствия для здоровья, возникающие в результате процедур, будут сведены к минимуму.

Результатом стало подписание и ратификация большинством государств - членов Совета Европы (все государства Евросоюза, а также Македония, Норвегия, Сербия, Соединенное Королевство Великобритании и Северной Ирландии, Швейцария) Конвенции об охране позвоночных животных, используемых для экспериментов или в других научных целях ETS N 123, Страсбург, 18 марта 1986 г. (далее Конвенция).

Конвенция распространяет свое действие на все виды деятельности, связанные с использованием лабораторных животных: размещение и уход за ними, проведение экспериментов, гуманное умерщвление (эвтаназия), выдача разрешений на использование животных в процедурах, контроль над заводчиками, поставщиками и пользователями, обучение и профессиональная подготовка кадров, статистический учет. Конвенция имеет два технических приложения, содержащих руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными (приложение А) и таблицы для представления статистической информации о количестве животных, использованных в научных целях (приложение В).

Минимум один раз в пять лет Конвенция подлежит пересмотру в ходе многосторонних консультаций сторон, проводимых рабочей группой, с целью анализа соответствия ее положений меняющимся обстоятельствам и новым научным данным. В результате принимается решение о пересмотре отдельных положений Конвенции или продлении их действия.

В ходе консультаций стороны привлекают государства, не являющиеся членами Совета Европы, а также взаимодействуют с негосударственными организациями, представляющими интересы ряда специалистов: исследователей, ветеринарных врачей, заводчиков лабораторных животных, ассоциаций по защите прав животных, специалистов в области наук о животных, представителей фарминдустрии и других, которые присутствуют на собраниях рабочей группы в качестве наблюдателей.

В 1998 г. стороны, подписавшие Конвенцию, приняли решение о пересмотре Приложения А. Рабочая группа завершила пересмотр приложения А на 8-м собрании (22-24 сентября 2004 г.) и предоставила его на утверждение Многосторонней консультации сторон. 15 июня 2006 г. 4-я Многосторонняя консультация сторон по Европейской Конвенции об охране позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях приняла пересмотренное приложение А к Конвенции. Настоящее приложение устанавливает требования к содержанию и уходу за животными, основанные на современных знаниях и надлежащей практике. Оно поясняет и дополняет основные положения статьи N 5 Конвенции. Цель настоящего приложения - помощь государственным органам, институтам и физическим лицам в их стремлении к достижению целей Совета Европы в данном отношении.

Глава "Общая часть" является руководством по размещению, содержанию и уходу за всеми животными, используемыми в экспериментальных и иных научных целях. Дополнительные рекомендации по наиболее часто используемым видам приведены в соответствующих разделах. В случае отсутствия информации в таком разделе следует соблюдать требования, приведенные в общей части.

Видоспецифичные разделы составлены на основании рекомендаций экспертных групп по работе с грызунами, кроликами, собаками, кошками, хорьками, нечеловекообразными приматами, сельскохозяйственными животными, мини-свиньями, птицами, амфибиями, рептилиями и рыбами. Экспертные группы предоставили дополнительную научно-практическую информацию, на основании которой были даны рекомендации.

Приложение А включает советы по дизайну помещений для содержания животных (вивариев), а также рекомендации и руководства по соблюдению требований Конвенции. Однако рекомендуемые стандарты помещений являются минимально допустимыми. В ряде случаев может потребоваться их увеличение, так как индивидуальные потребности в микроокружении могут существенно отличаться в зависимости от вида животных, их возраста, физического состояния, плотности содержания, целей содержания животных, например, для разведения или экспериментов, а также от длительности их содержания.

Пересмотренное приложение А вступило в силу через 12 месяцев после его принятия - 15 июня 2007 г.

Настоящий стандарт разработан с учетом нормативных положений Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях (ETS N 123), в частности приложения А и статьи N 5 Конвенции.

Серия ГОСТ "Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными" разработана на основе и включает все положения приложения А к Конвенции об охране позвоночных животных, используемых в экспериментах и в других научных целях, и, таким образом, эти стандарты гармонизированы с европейскими требованиями в данной области.

1 Область применения

Настоящий стандарт устанавливает общие требования к размещению, содержанию и уходу за лабораторными грызунами и кроликами, используемыми в учебных, экспериментальных и иных научных целях.

2 Нормативные ссылки

В настоящем стандарте использована нормативная ссылка на следующий стандарт:

ГОСТ 33215-2014 Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила оборудования помещений и организации процедур

Примечание - При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодному информационному указателю "Национальные стандарты", который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по выпускам ежемесячного информационного указателя "Национальные стандарты" за текущий год. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

3 Термины и определения

В настоящем стандарте применены термины с соответствующими определениями - по ГОСТ 33215-2014 .

4 Видоспецифичные требования к содержанию грызунов

4.1 Введение

4.1.1 Мыши

Лабораторная мышь была выведена из дикой домовой мыши (Mus musculus), норного и лазающего зверька, ведущего преимущественно ночной образ жизни и строящего гнезда для регуляции условий микросреды, укрытия и репродукции. Мыши очень хорошо лазают, однако неохотно пересекают открытые пространства и предпочитают держаться ближе к укрытиям - стенам или другим объектам. Тип социальной организации сообществ мышей варьирует и определяется в основном плотностью популяции. У репродуктивно активных самцов наблюдается выраженное территориальное поведение, беременные и кормящие самки могут проявить агрессию при защите гнезд. Так как мыши, особенно альбиносы, имеют плохое зрение, они в основном полагаются на обоняние и оставляют мочевые метки на участке обитания. У мышей также очень острый слух, они чувствительны к ультразвуку. Существуют значительные различия в поведении мышей разных линий.

4.1.2 Крысы

Лабораторная крыса была выведена из серой крысы (Rattus norvegicus). Крысы - социальные животные, они избегают открытые пространства и используют мочевые метки для маркировки территории. Обоняние и слух у них развиты сильно, при этом крысы особо чувствительны к ультразвуку; дневное зрение - слабое, но у некоторых пигментированных линий при неярком свете зрение достаточно острое. Крысы-альбиносы избегают освещенности свыше 25 люкс (лк). Активность крыс повышается в ночные часы. Молодые животные очень любопытны и часто устраивают социальные игры.

4.1.3 Песчанки

Монгольская или Полуденная песчанка (Meriones sp.) - социальное животное, ведущее преимущественно ночной образ жизни, однако в лабораторных условиях сохраняющее активность и при дневном свете. В дикой природе песчанки роют норы с туннельными входами для защиты от хищников и поэтому в лабораторных условиях зачастую демонстрируют стереотипное рытье, если им не предоставлены условия для рытья нор.

4.1.4 Хомячки

Дикий предок лабораторного хомячка - Mesocricetus sp. - животное, ведущее преимущественно одиночный образ жизни. Самки хомячков крупнее и агрессивнее самцов и могут сильно травмировать своего партнера. Хомячки часто устраивают в клетке обособленное место для туалета и маркируют территорию секретами желез, находящимися по бокам тела. Самки хомячков часто поедают детенышей, чтобы уменьшить количество потомства.

4.1.5 Морские свинки

Дикие морские свинки (Cavia porcellus) - социальные, активно перемещающиеся грызуны, которые никогда не роют норы, однако селятся в укрытиях или используют чужие норы. Взрослые самцы могут быть агрессивны по отношению друг к другу, но в целом агрессия наблюдается редко. Морские свинки имеют обыкновение замирать, если услышат неожиданный звук. Они могут целой группой панически броситься прочь в ответ на резкое и неожиданное движение. Морские свинки особенно чувствительны к перемещениям с места на место и после этого могут замирать на тридцать и более минут.

4.2 Контроль среды обитания

4.2.1 Вентиляция - по ГОСТ 33215-2014 , п.4.1.

4.2.2 Температура

Грызунов следует содержать при температуре от 20°С до 24°С. При групповом содержании температура в клетках со сплошным дном чаще бывает выше комнатной, и даже при хорошо работающей вентиляции может превышать ее на 6°С. Материал для строительства гнезд и домики позволяют животным самостоятельно контролировать микроклимат. Особое внимание следует уделять поддержанию температуры в барьерных системах и там, где содержатся животные, лишенные шерстного покрова.

4.2.3 Влажность

Относительная влажность в помещениях для содержания грызунов должна поддерживаться в диапазоне от 45% до 65%. Исключением являются песчанки, которых следует содержать при 35-55% относительной влажности.

4.2.4 Освещение

Освещенность клетки должна быть низкой. Стеллажи для клеток должны иметь затемненную верхнюю полку для снижения риска дегенерации сетчатки глаза у животных, особенно альбиносов, содержащихся в клетках верхнего яруса. Для наблюдения за животными в темноте в период их активной фазы, можно использовать невидимый грызунами красный свет.

4.2.5 Шум

Так как грызуны очень чувствительны к ультразвуку и используют его для общения, необходимо свести к минимуму посторонние звуковые сигналы в данном диапазоне. Ультразвук (свыше 20 кГц), издаваемый лабораторным оборудованием, в том числе капающими кранами, колесиками тележек и компьютерными мониторами, может стать причиной аномального поведения и нарушений репродуктивного цикла у животных. Рекомендуется периодически измерять уровень шума в помещениях для содержания животных в широком диапазоне частот и в течение длительного времени.

4.2.6 Требования к системам тревожной сигнализации - по ГОСТ 33215-2014 , п.4.6.

4.3 Условия и факторы, влияющие на здоровье животных, приведены в ГОСТ 33215-2014 , п.6.1 и 6.4.

4.4.1 Размещение

Социальные животные должны содержаться постоянными и гармоничными группами, хотя в отдельных случаях, например, при совместном содержании взрослых самцов мышей, хомячков или песчанок, групповое содержание проблематично из-за внутривидовой агрессии.

Если существует риск возникновения агрессии или травм, животных можно содержать индивидуально. Следует избегать нарушения стабильных и гармоничных групп, так как это может вызвать очень сильный стресс у животных.

4.4.2 Обогащение среды обитания

Клетки и материалы, используемые для обогащения среды, должны позволять животным проявлять нормальное поведение и снижать вероятность возникновения конфликтных ситуаций.

Подстил и материалы для создания гнезд, а также укрытия - важные компоненты среды обитания грызунов, используемых для разведения, поддержания колонии или в эксперименте. Они должны присутствовать в клетке постоянно, за исключением случаев, когда это противоречит ветеринарным соображениям или нарушает благосостояние животных. В случае необходимости удаления таких материалов из клеток следует согласовывать это с персоналом по уходу за животными и компетентным лицом, наделенным консультативными полномочиями по вопросам благополучия животных.

Материал для строительства гнезд должен позволять животным создавать законченное закрытое гнездо. При отсутствии такой возможности следует предоставлять животным домики для гнездовья. Подстилочный материал должен впитывать мочу и использоваться животными для оставления мочевых меток. Материалы для создания гнезд необходимы мышам, крысам, хомякам и песчанкам, так как позволяют им создавать подходящее микроокружение для отдыха и размножения. Гнездовые домики и другие укрытия важны для морских свинок, хомяков и крыс.

Морским свинкам всегда следует предоставлять материалы, такие как сено, чтобы они могли жевать его и прятаться в нем.

Деревянные палочки для грызения и жевания могут использоваться в качестве обогащения среды обитания всех лабораторных грызунов.

Представители большинства видов грызунов пытаются разделить клетку на несколько зон - для потребления и хранения корма, отдыха и мочеиспускания. В основе такого разделения может лежать запаховая метка, а не физический барьер, но, тем не менее, частичные заграждения могут быть полезны, так как они позволяют животным инициировать контакты с соседями по клетке или, наоборот, избегать их. Для усложнения среды очень рекомендуется использовать дополнительные объекты. Тубы, коробки и стеллажи для лазания - примеры конструкций, успешно используемых для грызунов. Помимо этого, они позволяют увеличить полезную площадь клетки.

Песчанки нуждаются в большем пространстве, чем грызуны других видов. Площадь клетки должна позволять им заниматься строительством и/или использовать норы подходящего размера. Песчанкам необходим толстый слой подстила для копания, построения гнезд и рытья нор, длина которых должна достигать 20 см.

Следует предусмотреть использование полупрозрачных или слегка окрашенных клеток, обеспечивающих хороший обзор для наблюдения за животными без причинения им беспокойства.

Те же принципы в отношении качества и количества пространства, материалов для обогащения среды и других требований, изложенных в настоящем документе, должны применяться к барьерным системам, например, к системам индивидуально вентилируемых клеток (ИВК), хотя особенности их конструкции могут потребовать изменений в реализации вышеизложенных принципов.

4.4.3 Ограждения: размеры и структура пола

Клетки должны быть сделаны из материалов, легко поддающихся чистке, а их дизайн - обеспечивать проведение наблюдений без причинения беспокойства животным.

Как только молодые животные становятся активными, им требуется пропорционально больше пространства, чем взрослым особям.

4.4.3.1 Размеры

В этой и последующих таблицах, представляющих рекомендации по содержанию грызунов, "высота клетки" означает расстояние между полом и верхом клетки, при этом более 50% минимальной площади клетки должно иметь данную высоту до помещения туда материалов для создания богатых стимулами условий (обогащение среды).

При планировании процедур необходимо учитывать возможность роста животных, для того чтобы обеспечить их достаточным жизненным пространством (как подробно показано в таблицах 1-5) на весь период исследования.

4.4.3.2 Структура пола

Сплошной пол с подстилочным материалом или пол с перфорацией, предпочтительнее решетчатых или сетчатых полов. В случае использования клеток с решетчатыми или сетчатыми полами животных необходимо, если это не противоречит условиям эксперимента, обеспечить сплошными или покрытыми подстилом участками пола для отдыха. Для морских свинок альтернативой могут быть перекладины. Допускается не использовать подстилочный материал при проведении спаривания животных.

Сетчатые полы могут стать причиной получения серьезных травм, поэтому следует тщательно проверять их на наличие плохо закрепленных деталей и острых выступов и своевременно их устранять.

Самки на поздних сроках беременности, во время родов и кормления детенышей должны содержаться исключительно в клетках со сплошным дном и подстилочным материалом.

Таблица 1 - Мыши: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 2 - Крысы: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 3 - Песчанки: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 4 - Хомячки: минимальные размеры клеток (ограждений)

Таблица 5 - Морские свинки: минимальные размеры клеток (ограждений)

4.4.4 Кормление - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.6.

4.4.5 Поение - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.7.

4.4.6 Подстилочный, гнездовой и абсорбирующий материал - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.8.

4.4.7 Чистка клеток

Несмотря на необходимость поддержания высоких гигиенических норм, может оказаться целесообразным оставлять животным некоторое количество запаховых меток. Следует избегать слишком частой чистки клеток, особенно при содержании беременных самок и самок с потомством, так как причиняемое беспокойство может стать причиной поедания потомства самкой или нарушения ее материнского поведения.

Решение о частоте проведения чистки клеток должно приниматься с учетом типа используемой клетки, вида животных, плотности колонии, способности вентиляционных систем поддерживать необходимое качество воздуха в помещении.

4.4.8 Обращение с животными

Следует стремиться к тому, чтобы причинять животным минимальное беспокойство и не нарушать условия их содержания, что особенно важно для хомячков.

4.4.9 Эвтаназия - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.11.

4.4.10 Ведение учетных записей - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.12.

4.4.11 Идентификация - по ГОСТ 33215-2014 , п.6.13.

5 Видоспецифичные требования к содержанию кроликов

5.1 Введение

В природных условиях кролики (Oryctolagus cuniculi) живут колониями. При содержании в неволе им необходимо предоставлять достаточно пространства с обогащенной средой, нехватка которого может привести к утрате нормальной двигательной активности и возникновению скелетных аномалий.

5.2 Контроль среды обитания

5.2.1 Вентиляция - по ГОСТ 33215-2014 , п.4.1.

5.2.2 Температура

Кроликов следует содержать при температуре от 15°С до 21°С. Температура в ограждениях со сплошным дном, где содержится группа кроликов, чаще всего бывает выше комнатной и даже при хорошо работающей системе вентиляции может превышать ее на 6°С.

Материал для строения гнезд и/или домики дают животным возможность самостоятельно контролировать микроклимат. Особое внимание следует уделять показаниям температуры в барьерных системах.

5.2.3 Влажность

Относительная влажность воздуха в помещениях для содержания кроликов не должна быть ниже 45%.

5.4.1 Размещение

Молодых кроликов и самок следует содержать гармоничными группами. Одиночное содержание допустимо, если его причинами являются благосостояние животного или ветеринарные соображения. Решение о возможности одиночного содержание животных в экспериментальных целях должно приниматься после консультации с персоналом по уходу за животными и ответственным лицом, наделенным консультативными полномочиями по вопросам физического и психического состояния животных. Взрослые некастрированные самцы могут проявлять территориальную агрессию, поэтому их не следует держать вместе с другими некастрированными самцами. Для группового содержания молодняка и взрослых самок кроликов прекрасно зарекомендовали себя напольные загоны с насыщенной средой обитания. Тем не менее, следует внимательно следить за группой, чтобы предупредить возможную агрессию. Идеально подходят для группового содержания однопометники, живущие совместно с момента отлучения их от матери. В тех случаях, когда невозможно групповое содержание, животные должны находиться как можно ближе друг к другу, в пределах видимости.

5.4.2 Обогащение среды обитания

Подходящими материалами для обогащения среды обитания кроликов являются грубые корма, блоки сена или палочки для жевания, а также конструкции, позволяющие укрыться.

В напольных загонах для группового содержания следует предусмотреть размещение разделительных барьеров и сооружений-укрытий, позволяющих животным наблюдать оттуда. При разведении кроликов следует обеспечивать гнездовым материалом и родильными ящиками.

5.4.3 Ограждения: размеры и структура пола

Преимущество следует отдавать прямоугольным клеткам, в которых должна быть приподнятая область, площадью не превышающая 40% общей площади пола. Полка должна позволять животным сидеть и лежать, а также свободно двигаться под ней. Хотя высота клетки должна позволять кролику сидеть, не касаясь кончиками поднятых ушей потолка, такое же требование к приподнятой площадке не предъявляется. Если есть достаточные научные или ветеринарные основания для того, чтобы не размещать в клетке такую полку, то площадь клетки должна быть на 33% больше для одного кролика и на 60% - для двух кроликов. Там, где это возможно, кроликов следует содержать в загонах.

5.4.3.1 Размеры

Таблица 6 - Кролики старше 10 недель: минимальные размеры ограждений

Данные таблицы 6 относятся и к клеткам, и к вольерам. В клетках должна присутствовать приподнятая площадка (см. таблицу 9). Вольеры должны быть оборудованы разделительными барьерами, позволяющими животным инициировать социальные контакты или избегать их. Для каждого с 3-го по 6-го подсаживаемого в вольер кролика к площади вольера следует добавить 3000 см, а для каждого последующего - 2500 см.

Таблица 7 - Самка кролика с детенышами: минимальные размеры ограждений

Как минимум за 3-4 дня до родов самке следует предоставить отдельный отсек или родильный ящик, в котором она может построить гнездо. Лучше, если родильный ящик будет размещен вне места постоянного содержания самки. Следует также предоставить солому или другой материал для обустройства гнезда. Ограждение для разведения кроликов должно быть организовано таким образом, чтобы самка могла уйти от своих подросших крольчат, способных покинуть гнездо, в отдельный отсек, укрытие или на приподнятую площадку. После отлучения от матери кроликов из одного помета следует как можно дольше содержать вместе в том же ограждении, где они родились.

В ограждении для разведения допускается содержать до восьми однопометников до достижения ими возраста семи недель. Пять однопометников 8-10-недельного возраста можно содержать на минимально допустимой площади ограждения.


Таблица 8 - Кролики моложе 10-недельного возраста: минимальные размеры ограждений

Данные таблицы 8 относятся и к клеткам, и к вольерам. Вольеры должны быть оборудованы разделительными барьерами, позволяющими животным инициировать социальные контакты или избегать их. После отлучения от матери однопометников следует как можно дольше содержать вместе в том же ограждении, где они родились.


Таблица 9 - Кролики старше 10-недельного возраста: оптимальные размеры приподнятой площадки в ограждениях, имеющих размеры, указанные в таблице 6.

Для обеспечения правильного использования приподнятой площадки и ограждения в целом в таблице 9 приводятся оптимальные размеры и высота, на которой находится площадка. Допускается отклонение до 10% в сторону уменьшения или увеличения заданных размеров. Если имеются достаточные научные или ветеринарные основания для того, чтобы не размещать в ограждении такую полку, то площадь ограждения должна быть на 33% больше для одного кролика и на 60% - для двух кроликов с целью обеспечения их пространством для нормальной двигательной активности и возможностью избегать контакта с доминирующей особью.

Для кроликов не старше 10-недельного возраста оптимальные размеры приподнятой площадки составляют 55 см25 см, а высота ее над уровнем пола должна позволять животным пользоваться и площадкой, и пространством под ней.

5.4.3.2 Дно клеток

Не следует использовать ограждения с решетчатыми полами без обеспечения участка, достаточного для единовременного отдыха всех животных. Сплошные полы с подстилочным материалом или полы с перфорацией лучше решетчатых или сетчатых.
МКС 13.020.01

Ключевые слова: лабораторные животные, грызуны, кролики

Электронный текст документа
подготовлен АО "Кодекс" и сверен по:
официальное издание
М.: Стандартинформ, 2016

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ - различные виды животных, специально разводимые в условиях лабораторий или питомников для экспериментальной или производственной практики. Л. ж. используют в целях диагностики болезней, моделирования различных физиол, и патол, состояний, изучения леч.-проф, препаратов, химических и физических факторов, производства биологических препаратов - диагностических сывороток, вакцин, культур тканей и др.

К лабораторным относятся животные различных систематических групп: простейшие, черви, членистоногие, иглокожие, амфибии, птицы, млекопитающие. Однако чаще всего Л. ж. подразделяют на беспозвоночных и позвоночных.

Позвоночные лабораторные животные

Использование позвоночных животных человеком с познавательной целью началось, по-видимому, в период развития скотоводства. В последующем на животных стали изучать строение и функции различных органов живых организмов. В частности, известны наблюдения древнегреческого естествоиспытателя Диогена (5 в. до н. э.), который, вскрывая трупы животных, установил разные функции предсердий. Позднее анатомию и физиологию изучали на животных Аристотель, К. Гален, У. Гарвей и др. Первоначально эксперименты проводились на домашних животных. В 15 в. стали известны белые мыши, крысы и морские свинки. Однако понятие «лабораторные животные» сложилось к концу 19 в.

Всего в мед.-биол, исследованиях используют до 250 видов животных. Одни виды постоянно разводят в лабораториях и питомниках для научных исследований (белые мыши, белые крысы, морские свинки, кролики, хомяки, кошки, собаки, обезьяны, мини-свиньи и др.). Другие - периодически отлавливают для эксперимента (полевки, песчанки, суслики, хорьки, сурки, броненосцы, лемминги, амфибии, рыбы и др.). Имеется группа лаб. птиц (куры, голуби, канарейки, перепелки и др.). Часть мед. экспериментов проводят на с.-х. животных (овцы, свиньи, телята и др.). От общего числа Л. ж. на долю мышей приходится ок. 70 %, крыс - 15%, морских свинок - 9%, птиц - 3%, кроликов - 2% и прочих - 1 %.

Интерес исследователей к грызунам обусловлен в основном тем, что многие из них имеют малые размеры тела, высокую плодовитость и короткий период жизни; за несколько месяцев жизни грызуна можно проследить в организме процессы, которые у человека протекают годами. Средняя продолжительность жизни белых мышей 1,5 -2 года, крыс 2-2,5 года, хомяков 2-5 лет, морских свинок 6-8 лет, кроликов 4-9 лет.

При разведении Л. ж. проводят контроль по генетическим, экологическим, морфологическим признакам, а также по состоянию здоровья.

Генетически Л. ж. подразделяются на нелинейных (гетерозиготных) и линейных (гомозиготных). Нелинейных животных разводят на основе случайных скрещиваний и в силу этого они обладают высокой степенью гетерозиготности. Нарастание инбридинга (см.) у этой группы Л. ж. допускается не более 1 % на поколение.

В научных учреждениях, где проводятся исследования на Л. ж., должны быть научно-вспомогательные подразделения: виварий (см.) и экспериментально-биологическая клиника. В виварии содержатся и частично разводятся отдельные виды животных с последующей передачей их для экспериментального исследования. В экспериментально-биологической клинике лишь содержатся животные, на которых проводятся исследования. Виварии и экспериментально-биологические клиники размещаются в отдельном здании (комплексе зданий). Для земноводных животных и рыб, используемых в экспериментах, оборудуются соответствующие помещения.

Для удовлетворения постоянно возрастающего спроса на Л. ж. разных видов, линий и категорий возникла самостоятельная отрасль хозяйства - лабораторное животноводство с соответствующими научными и производственными базами. Организована соответствующая подготовка рабочих кадров. == Беспозвоночные лабораторные животные == Помимо позвоночных животных, в лабораториях находят применение также и многие беспозвоночные: простейшие, гельминты, членистоногие (насекомые, клещи) и др. Цели и методы использования их в качестве Л. ж. весьма разнообразны. Незаменимыми объектами для разнообразных лаб. исследований издавна служат простейшие (тип Protozoa). Быстрота их размножения, малые размеры, сравнительная простота и удобство содержания в условиях лаборатории делают простейших самыми дешевыми экспериментальными моделями (см. Простейшие).

Разработаны методы замораживания и длительного хранения некоторых видов простейших (трипаносом, лейшманий, токсоплазм и др.) в жидком азоте. Этот метод позволяет создавать криобанки штаммов простейших, что удобно при использовании их в качестве Л. ж.

Способность многих простейших размножаться бесполым путем является предпосылкой получения чистых линий простейших организмов - клонов, которые служат незаменимым объектом для генетических, иммунологических и других исследований.

При постановке экспериментов с простейшими следует учитывать не только их вид, штамм или изолят, но нередко и принадлежность к определенной генетической линии. Большое значение при лаб. содержании имеет знание жизненного цикла развития простейшего и отдельных стадий этого цикла (см. Жизненный цикл).

При работе с простейшими значительное влияние оказывают биотические и абиотические факторы окружающей среды.

Крупные амебы (Amoeba proteus, Chaos, Pelomyxa и др.) используют при цитогенетических и других исследованиях, в частности при анализе наследственной изменчивости, возникновения и частоты мутаций. В микрургических опытах получены ядерно-цитоплазматические гибриды - гетерокарионы, на которых изучают явления трансплантационной несовместимости, эпигенетической изменчивости и т. д. На этих объектах проводят разнообразные наблюдения по воздействию ионизирующего и ультрафиолетового излучения, хим. мутагенеза.

Инфузории представляют собой классические объекты и для цитогенетических исследований, включая генетический анализ при изучении некоторых проблем изменчивости и наследственности. Инфузории служат удобными объектами при токсикологических исследованиях, а также при изучении биол, эффекта действия ультрафиолетовых лучей, проникающей радиации и других факторов. При этом учитываются изменения скорости и характера движения, пульсации сократительных вакуолей, ядерного аппарата, нарушения темпов деления и т. д. В последние годы некоторые виды инфузорий нашли широкое применение в экспериментах по молекулярной биологии, в частности в генной инженерии. Для содержания инфузорий in vitro разработаны разнообразные по составу среды - от самых простых в виде настоев трав и листьев до сложных синтетических с заранее определенным хим. составом.

Необходимым условием использования в эксперименте членистоногих является проверка исходной природной популяции (родоначальника лаб. культуры) на чистоту линии - отсутствие естественной зараженности возбудителями болезней, поскольку кровососущие членистоногие имеют определяющее значение в качестве переносчиков и хранителей возбудителей многих трансмиссивных инфекций (риккетсиозов, арбовирусных инфекций, лейшманиозов, филяриатозов, малярий и др.). Для определения степени участия какого-либо вида членистоногих в переносе возбудителей инфекций или его истинной роли в эпидемиологии и эпизоотологии необходимо проведение экспериментальных исследований с кровососущими членистоногими и возбудителями болезней.

Аргасовых (Argasidae) и иксодовых (Ixodidae) клещей используют для длительного сохранения возбудителей спирохетозов, риккетсиозов, арбовирусных инфекций и др.

Клещей, комаров, москитов, мух и других членистоногих используют в экспериментах по испытанию эффективности инсектицидов, акарицидов и репеллентов, а также для разработки биол, методов борьбы с переносчиками возбудителей болезней человека и животных и вредителями сельского хозяйства.

Для экспериментального изучения как переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней человека (энцефалитов, геморрагических лихорадок, риккетсиозов и др.), а так-же при испытании эффективности действия акарицидов и разработке специфических методов биол, борьбы используют иксодовых клещей (родов Ixodes, Haemaphysalis, Hyalomma, Rhipicephalus, Dermacentor). Иксодовые клещи легко культивируются в лаб. условиях. Для создания лаб. культуры иксодовых клещей собирают с с.-х. животных (уже напившихся кровью) или с растительности в природных стациях (голодных). Сытых клещей помещают в специально смонтированные увлажненные пробирки для яйцекладки. Голодных клещей кормят на Л. ж. под матерчатыми колпаками, которые приклеивают на спину животному-прокормителю (свинки, кролики, мыши, хомяки, а также овцы и крупный рогатый скот). При правильном уходе клещи одной линии культивируются в лаборатории годами.

Удобной лаб. моделью являются аргасовые клещи (родов Ornithodoros, Alveonasus, Argas). Их используют для экспериментального изучения отношений клещей с возбудителями (спирохеты, вирусы, риккетсии), а также для длительного (многолетнего) сохранения возбудителей болезней в активном состоянии. Аргасовых клещей при культивировании кормят или на Л. ж., или кровью животных через мембрану, приготовляемую из кожи мыши или цыпленка. Разработан способ кормления аргасовых клещей на курином эмбрионе путем подсадки их в воздушную камеру яйца. Клещи Alveonasus lahorensis, Ornithodoros papillipes и др. культивируются в лабораториях уже многие десятилетия.

В качестве Л. ж. используют также гамазовых клещей (Gamasoidea). Среди них особенно удобны для содержания в условиях лаборатории клещи Ornithonyssus bacoti (крысиный клещ), Dermanyssus gallinae (куриный клещ), Allodermanyssus sanguineus (мышиный клещ). Гамазовых клещей используют для моделирования инф. процесса при риккетсиозах, клещевом энцефалите, туляремии, геморрагических лихорадках. В лаборатории устраивают так наз. завод - искусственное гнездо, в к-рое помещают клещей и Л. ж. (мыши, куры и др.) для их кормления. По мере надобности клещей отбирают из завода и в процессе эксперимента и наблюдения содержат в специальных увлажненных камерах.

Для экспериментальных работ в различных лабораториях разводят кровососущих комаров (Culicidae) разных родов (Aedes, Anopheles, Culex). В ряде случаев удобно пользоваться комарами рода Culex pipiens molestus, которых легко разводить в условиях лаборатории; оплодотворенные самки в благоприятных условиях не впадают в диапаузу и могут откладывать яйца без предварительного питания кровью. Вышедшие из яиц личинки развиваются в воде, богатой органическими веществами.

Из комаров рода Aedes наиболее легко разводить комаров вида Aedes aegypti, являющихся переносчиками вирусов желтой лихорадки и других заболеваний человека, а также плазмодий птиц и др. Их можно содержать в сравнительно небольших садках; самок комаров кормят кровью кроликов или других животных. Отложенные самками Aedes яйца можно длительное время хранить в сухом состоянии; для выведения личинок их помещают в сосуд с водой. Кормом для личинок служит рисовая пудра, порошок из дафний, яичного желтка и др. Вода в сосуде с личинками должна быть чистой и не загрязняться кормом. Сосуды, в которых образовались куколки, помещают в марлевые садки для выплода комаров.

Для самых разнообразных экспериментальных исследований, в частности для изучения передачи возбудителей чумы, риккетсиозов и других бактериальных заболеваний людей и животных, изучения действия различных инсектицидов, репеллентов и т. п., используют выведенные в условиях лаборатории культуры блох (Aphaniptera). Наиболее удобными для культивирования в условиях лаборатории являются блохи крыс - Xenopsylla cheopis, Ceratophyllus fasciatus и др. B лаборатории их культивируют в специальных заводах - стеклянных банках, в которые подсаживают животных-прокормителей; в качестве Л. ж. применяют также вшей - переносчиков патогенных спирохет и риккетсий.

С целью разработки научных основ разведения и обоснованного выбора на конкретное исследование видов животных в СССР, Англии, США, Франции, ФРГ, Японии и других странах организованы научные центры по сравнительной биологии Л. ж. В СССР таким центром является Научно-исследовательская лаборатория экспериментально-биологических моделей АМН СССР. Координация работы в данной области осуществляется Международным комитетом по лабораторным животным (ПК Л А), с к-рым сотрудничает более 40 стран, в т. ч. СССР. Ежегодно проводятся научные конференции по разным вопросам биологии Л. ж. и биол, моделирования. По этим вопросам за рубежом издается более 30 периодических изданий. Организованы международные и регионарные центры: Международный справочный центр В ОЗ/М АИР по обеспечению животными со спонтанным развитием опухолей (Нидерланды, Амстердам, Институт рака), Международный справочный центр ФАО/ВОЗ по микоплазмам животных (Дания, г. Орхус, мед. ф-т ун-та). Регионарный справочный центр по вирусам обезьян (США, штат Техас, отдел микробиологии и инф. болезней). Справочные центры имеются при ИКЛА: по гистосовместимости мышей (ПНР), крыс (ФРГ и США), морских свинок (США), собак (ФРГ), по вирусам грызунов (ЧССР, Англия, ФРГ, Япония), по безволосым мышам (Дания), по возбудителям малярии птиц (Канада) и др.

В публикациях результатов исследований, полученных на Л. ж., по рекомендации ВОЗ, требуется указывать их вид, линию, возраст, пол, источник приобретения, условия содержания и кормления.

Из дополнительных материалов

Броненосцы (дополнение к одноименной статье, опубликованной в 12-м томе) - млекопитающие семейства Dasypodidae Bonaparte, 1838 из отряда неполнозубых - Edentata.

В семействе броненосцев 9 родов (21 вид). Броненосцы (син. армадиллы) - древнейшие из живущих млекопитающих, распространены в Южной и Центральной Америке, на юге США. Они ведут ночной образ жизни, живут в норах. Название «броненосцы» связано с наличием на дорсальной поверхности тела панциря, состоящего из отдельных костных пластинок, покрытых роговым слоем (так наз. кожный скелет, не встречающийся у других млекопитающих). Длина туловища броненосцев различных видов колеблется от 12 до 100 см, вес до 55 кг.

Броненосцы используются в медицине и биологии как лабораторные животные, особенно часто - девятипоясный броненосец - Dasy-pus novemcinctus Linnaeus, 1758 (рис. 1). Длина тела взрослого девятипоясного броненосца 40-55 см, вес 3--7 кг; панцирь состоит из грудного и тазового щитков, разделенных 9 подвижными поясами. К особенностям биологии девятипоясных броненосцев относится пониженная температура тела (32-35°), большая длительность задержки имплантации бластоциста - до 4,5 мес. (общая продолжительность беременности ок. 9 мес), воспроизводство четырех монозиготных детенышей, способность переносить длительное отсутствие экзогенного кислорода, сниженные реакции клеточного иммунитета при выраженных гуморальных иммунных реакциях; продолжительность жизни - до 15 лет.

У броненосцев рода Dasypus из одной оплодотворенной яйцеклетки развивается несколько эмбрионов (истинная полиэмбриония), что делает их уникальной естественной моделью для изучения механизмов появления близнецов, а также многих вопросов наследственности и изменчивости. Монозиготные близнецы броненосцев являются объектом для исследований в области трансплантации, а также для иммунологических, токсикол, и тератол. исследований. Фармакокинетика лекарственных средств в организме броненосцев весьма близка к таковой у человека. Напр., установлено, что талидомид вызывает уродства плода броненосцев, что не наблюдалось у других лаб. животных.

Броненосцы легко адаптируются к неволе. Содержать их лучше всего в небольших (2-4 м2) вольерах с конурой для гнезда и ящиком для песка. В качестве подстилочного материала обычно используют обрезки бумаги или мох. В природе они питаются в основном насекомыми, червями, растительная пища составляет менее 10% рациона. В виварии в их рацион включают мясной фарш, яйца, молоко, овощи, фрукты. Броненосцы не агрессивны, поэтому уход и экспериментальная работа с ними не представляют трудностей. В неволе девятипоясные броненосцы не размножаются (нек-рые другие виды, напр, щетинистые броненосцы, размножаются).

Библиография: Башенина Н. В. Руководство по содержанию и разведению новых в лабораторной практике видов мелких грызунов, М., 1975, библиогр.; 3 а-паднюк И. П., Западнюк В. И. и 3 а х а р и я Е. А. Лабораторные животные, Киев, 1974, библиогр.; Лабораторные методы исследования патогенных простейших, сост. Д. Н. Засухин и др., М., 1957; Лейн-Петтер У. Обеспечение научных исследований лабораторными животными, пер. с англ., М., 1964, библиогр.; Медведев H. Н. Линейные мыши, Л., 1964, библиогр.: Саркисов Д. С. и P e м e з o в П. И. Воспроизведение болезней человека в эксперименте, М., 1960, библиогр.; The coccidia, ed. by D. М. Hammond а. P. L. Long, p. 482, Baltimore - L., 1973; Flynn R. Parasites of laboratory animals, Ames, 19 73; Handbook of laboratory animal science, ed. by E. С. Melby a. N. H. Altman, v. 1-3, Cleveland, 1974-1976; Kohler D., Madry M. u. Hein-e с k e H. Einfiihrung in die Ver such -stierkunde, Jena, 1978; Muller G. u. K i e s s i g R. Einfiihrung in die Versu-chstierkunde, Jena, 1977.; Соколов В. Е. Систематика млекопитающих, с. 362, М., 1973; В e n i г s с h k e K. Why armadillos? в кн.: Animal models for biomedical research, p. 45, Washington, 1968; Kirch-h e i m e r W. F. a. S t o r r s E. E. Attempts to establish the armadillo (Dasypus novemcinctus Linn) as a model for the study of leprosy, Int. J. Leprosy, v. 39, p. 693, 1971; Merit t D. A. Edentate diets, I. Armadillos, Lab. Animal Sci., v. 23, p. 540, 1973; Peppier R. D. Reproductive parameters in the nine-banded armadillo, Anat. Rec., v. 193, p. 649, 1979; S t o r r s E. E. The nine-banded armadillo, a model for biomedical research, в кн.: The laboratory animal in drug testing. ed. by A. Spiegel, p. 31, Jena, 1973.

В. А. Душкин; Д. H. Засухин, Л. М. Гордеева; A. А. Ющенко.

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ

лаборато́рные живо́тные , животные, специально выращиваемые для проведения на них медицинских, ветеринарных и биологических исследований. К традиционным Л. ж. относятся белые мыши, белые крысы, различные виды хомяков, морские свинки, кролики, кошки, собаки; к нетрадиционным — хлопковые крысы, полёвки, песчанки, хорьки, опоссумы, броненосцы, обезьяны, мини-свиньи, мини-ослы, сумчатые животные, рыбы, амфибии и др. Имеется группа лабораторных птиц (куры, голуби, перепёлки и др.). Кроме Л. ж. , в экспериментах используются домашние животные, чаще овцы и свиньи. Продуцентами иммунных и диагностических сывороток являются лошади, ослы, бараны и кролики. Находят применение в эксперименте и многие беспозвоночные ( , например дрозофила), а также простейшие.

Л. ж. контролируются по генетическим, экологическим, морфологическим показателям и по состоянию здоровья. Разводят их в специальных питомниках или в вивариях при научных учреждениях. Используемые в эксперименте нелинейные Л. ж. должны обладать высокой степенью гетерозиготности. Чем меньше закрытая популяция разводимых нелинейных животных, тем выше степень нарастания среди них инбридинга. Для исследований всё шире применяют гомозиготных (инбредных, линейных) животных, выводимых на основе тесного инбридинга (рис. 1). Известно около 670 линий мышей, 162 линии крыс, 16 линий морских свинок, 66 линий хомяков, 4 линии песчанок и 7 линий цыплят. Каждая линия имеет свои особенности в наборе генов, чувствительности к различным антигенам и стрессовым факторам. Линейные животные систематически контролируются на гомозиготность. При разведении Л. ж. получают у мышей 5 помётов в год, в среднем по 7 мышат в каждом помёте, соответственно у крыс — 5 и 7, у морских свинок — 3 и 5, у кроликов — 4 и 6. Помещения для Л. ж. (виварии) должны быть высокогигиеничными, просторными, с 10-кратным обменом воздуха в 1 ч и влажностью воздуха 50—65%. На 1 м 2 площади размещают 65 взрослых или 240 молодых мышей, 20—100 крыс, 30—40 хомяков, 15—18 морских свинок, 3—4 кролика. В одной клетке допускается содержать не более 15 мышей, 10 крыс, по 5 хомяков и морских свинок, 1 кролика. Не менее 50% площади вивария отводится под подсобные помещения. Во избежание обмена инфекционными агентами не допускается содержание разных видов Л. ж. в одной комнате или клетке. Мышей, крыс, морских свинок и хомяков содержат преимущественно в пластмассовых конусообразных ванночках с сетчатой крышкой; кроликов, собак, обезьян и птиц — в металлических клетках. Ванночки и клетки размещают на стеллажах в 1—6 ярусов (рис. 2), оборудуют автоматическими поилками и бункерными кормушками, перед использованием тщательно моют и дезинфицируют физическими или химическими средствами. Ванночки мышей и крыс еженедельно заменяют чистыми. Удаление из них подстилки и мойку производят в специальном помещении, оборудованном соответствующими приспособлениями или моющими машинами. Кормят Л. ж. натуральными кормами или брикетированными концентратами по разработанным нормам суточной потребности. Брикетированный корм задают в кормушки на несколько суток. Обслуживает Л. ж. обученный персонал, прошедший медицинское обследование.

Л. ж. свойственны многие инфекционные болезни: сальмонеллёзы, листериоз, стафилококкозы, оспа, вирусная диарея, лимфоцитарный хориоменингит, кокцидиозы, гельминтозы, микозы, клещевые поражения и др. Встречаются латентное носительство (особенно у крыс) патогенных бактерий и вирусов, скрытые формы инфекционных болезней мало изученной этиологии. Некоторые инфекции Л. ж. являются зооантропонозами. Профилактика болезней Л. ж. основана на строгом соблюдении санитарно-гигиенических правил, максимальном обеззараживании окружающей среды (помещений, воздуха, оборудования, кормов, подстилки и т. п.). В некоторых странах организовано производство Л. ж. без специфических патогенных факторов, так называемых СПФ-животных (см. ). Возрастающая потребность в Л. ж. обусловила зарождение науки о Л. ж. , которая включает в себя генетику, экологию, морфологию, физиологию, патологию и другие разделы, а также специальное лабораторное животноводство. Во многих странах (США, Великобритании, ФРГ, Франции, СССР и др.) существуют соответствующие научные центры, координация работы которых осуществляется Международным комитетом по науке о Л. ж. (YCLAS).

Литература:
Башенина Н. В., Руководство по содержанию и разведению новых в лабораторной практике видов мелких грызунов. М., 1975;
Санитарные правила по устройству, оборудованию и содержанию экспериментально-биологических клиник (вивариев), М., 1973.

Ветеринарный энциклопедический словарь. - М.: "Советская Энциклопедия" . Главный редактор В.П. Шишков . 1981 .

Смотреть что такое "ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ" в других словарях:

Лабораторные животные - см. Животные лабораторные. (Источник: «Словарь терминов микробиологии») … Словарь микробиологии

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ - ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ, животные, служащие в лабораториях различного типа для,научшэ практических целей. Л. ж. лгогут быть такие, к рые легко добываются, хорошо содержатся или разводятся в лабораторной обстановке и кроме того пригодны по своим… … Большая медицинская энциклопедия

Лабораторные животные - животные, используемые в научном эксперименте или опыте, биологическом тестировании, учебном процессе, а также в производстве биологических препаратов... Источник: МОДЕЛЬНЫЙ ЗАКОН ОБ ОБРАЩЕНИИ С ЖИВОТНЫМИ (Вместе с ПОТЕНЦИАЛЬНО ОПАСНЫМИ ПОРОДАМИ… … Официальная терминология

ЛАБОРАТОРНЫЕ ЖИВОТНЫЕ - используются с науч. целью в биологии, медицине, ветеринарии, с. х ве. В зависимости от задач науч. эксперимента подбирают Л. ж., наиб, подходящих для данных целей. При этом учитываются не только биол. особенности вида, обеспечивающие простоту и… …

Лабораторные животные - экспериментальные, или подопытные, животные, используемые в лабораториях для научных и практических целей. Л. ж. должны быть здоровы, обладать некоторыми специфическими особенностями (например, восприимчивостью к исследуемым инфекциям,… … Большая советская энциклопедия

Животные модельные - * жывёлы мадэльныя * аnimal model лабораторные животные, которых используют для проведения научных исследований, особенно медицинских, с целью изучения наследственных болезней человека. В н. вр. в экспериментальной медицине применяют около 250… … Генетика. Энциклопедический словарь

ЖИВОТНЫЕ В ЭКСПЕРИМЕНТАХ - использование животных в биологических, физиологических и медицинских исследованиях, в тестах на токсичность различных продуктов и препаратов, в различных образовательных программах и т.п. Животных при этом либо забивают, а затем исследуют их… … Энциклопедия Кольера

Животные лабораторные - (экспериментальные) разнородные виды животных, используемые в лабораториях для решения научных и прикладных целей. В настоящее время в экспериментальной медицине применяют около 250 видов позвоночных и беспозвоночных животных. Традиционными для… … Словарь микробиологии

ЖИВОТНЫЕ - (Animalia), царство живых организмов, одно из самых крупных подразделений в системе органич. мира. Возникли, вероятно, ок. 1 1,5 млрд. лет назад в море в форме клеток, напоминающих микроскопич. бесхлорофильных амебоидных жгутиконоспев. Наземные Ж … Биологический энциклопедический словарь

Животные в космосе - Эксперименты, которые должны были определить, возможен ли полет человека в космос, начались в СССР и США в 1940 1950 х годах. Первым этапом биокосмических исследований стали многократные полеты собак, обезьян и других животных в ракетах на высоте … Энциклопедия ньюсмейкеров

Книги

• Лабораторные животные. Учебное пособие , Стекольников Анатолий Александрович , Щербаков Григорий Гаврилович , Яшин Анатолий Викторович , В пособии приведен материал по важным отраслям ветеринарии и зоотехнии, касающийся содержания, кормления и болезней лабораторных животных. Изложен по общепринятой методике, соответствующей… Категория: Ветеринария Серия: Учебники для вузов. Специальная литература Издатель:

В связи с тем, что вирусы могут размножаться только в живых клетках, на самых ранних этапах развития вирусологии широко применяли культивирование вирусов в организме лабораторных животных, специально выращиваемых для проведения на них исследований.

Используют: 1)для обнаружения вируса в ПМ 2)первичного выделения вируса из ПМ 3)накопления вирусной массы 4)поддержания вируса в лаборатории в активном сост. 5)титровании вируса 6)в качестве тест-объекта в РН 6)получение гипериммунных сывороток. Используемые животные: белые мыши (бешенство, ящур), белые крысы (грипп свиней, б. Ауески), морские свинки (бешенство, ящур, чума плотоядных). Кролики (бешенство, миксомы кроликов).

Требования к лабораторным животным - животное должно быть чувствительным к данному вирусу; возраст его имеет большое значение для культивирования многих вирусов. Большинство вирусов лучше размножается в организме молодых и даже новорожденных животных; стандартная чувствительность достигается подбором животных определенного возраста и одинаковых по массе. По чувствительности наибольшей стандартностью обладают так называемые линейные животные, полученные в результате близкородственного скрещивания в течении ряда поколений; лабораторные животные должны быть здоровы. Животные, поступающие в виварий вирусологической лаборатории, должны быть привезены из благополучного по инфекционным заболеваниям хозяйства. Их содержат на карантине и ведут клиническое наблюдение. При наличии заболевания их уничтожают.

Животных размещают так, чтобы с одной стороны, было обеспечено функционирование всех систем организма в пределах физиологической нормы, с другой - исключено взаимное перезаражение и распространение инфекции за пределы вивария. Для животных разных видов применяют разные способы индивидуальной метки. Для крупных животных и кур используют металлические бирки со штампованным номером. При использовании в эксперименте небольшой группы животных и при непродолжительном сроке его можно выстригать шерсть знаками на спине, бедрах. Метка белых мышей, белых крыс может быть проведена ампутацией отдельных пальцев на передних или задних конечностях. Часто пользуются методом нанесения цветных пятен на непигментированную шерсть. Заражение лабораторных животных.

• 1. подкожно - спина.
• 2. Внутрикожно - пятка
• 3. Внутримышечно - бедро
• 4. Внутривенно - в хвост (предварительно растерев горячей водой и пережав)
• 5. Интранозально - капля в нос (предварительно дают слабый эфирный наркоз, что бы предупредить чихание)
• 6. Интероцеребрально - череп аккуратно просверливается иголочкой, не нажимать, капля уходит сама.

Все поверхности предварительно смазывают йодированным спиртом.

Препарирование лаб. животных (на примере белой мыши)

• - Кожа смазывается дезинфектором.
• - Производится разрез по linea alba.
• - Вскрытие грудины - берутся легкие и помещаются в пробирку №1
• - Вскрытие брюшной полости - берутся печень, селезенка, почка и помещаются в пробирку №2.
• - Производится вскрытие черепной коробки. Берется головной мозг, делаются срезы 4-х слоев, кусочки помещаются на фильтровальную бумагу и делаются отпечатки на стекло.

Публикации по теме:

1. https://doi.org/10.30895/1991-2919-2018-8-4-207-217.

1. Макарова М.Н., Рыбакова А.В., Гущин Я.А., Шедько В.В., Мужикян А.А., Макаров В.Г. Анатомо-физиологическая характеристика пищеварительного тракта у человека и лабораторных животных // Международный вестник ветеринарии. -2016, № 1. –С. 82-104.
2. Воронин С.Е., Макарова М.Н., Крышень К.Л., Алякринская А.А., Рыбакова А.В. Хорьки, как лабораторные животные // Международный вестник ветеринарии. -2016, № 2. –С. 103-116.
3. Рыбакова А.В., Ковалева М.А., Калатанова А.В., Ванатиев Г.В., Макарова М.Н. Карликовые свиньи как объект доклинических исследований // Международный вестник ветеринарии. -2016, № 3. –С. 168-176.
4. Воронин С.Е., Макарова М.Н., Крышень К.Л., Алякринская А.А., Рыбакова А.В. Хорьки как лабораторные животные // Материалы IV-го Международного конгресса ветеринарных фармакологов и токсикологов «Эффективные и безопасные лекарственные средства в ветеринарии». Санкт-Петербург, 2016. –С. 46-47.
5. Горячева М.А., Гущин Я.А., Ковалева М.А., Макарова М.Н. Возможность применения лидокаина гидрохлорида и калия хлорида для эвтаназии лабораторных кроликов // Материалы IV-го Международного конгресса ветеринарных фармакологов и токсикологов «Эффективные и безопасные лекарственные средства в ветеринарии». Санкт-Петербург, 2016. –С. 55-56.
6. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Надлежащее содержание и уход за карликовыми свиньями для доклинических иссдований // Материалы IV-го Международного конгресса ветеринарных фармакологов и токсикологов «Эффективные и безопасные лекарственные средства в ветеринарии». Санкт-Петербург, 2016. –С. 46-47.
7. Сусоев А.И., Авдеева О.И., Мужикян А.А., Шедько В.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Опыт доклинического изучения оральнодиспергируемых лекарственных средств на хомяках // Тезисы докладов VII научно-практической конференции «Актуальные проблемы оценки безопасности лекарственных средств». Электронное приложение к журналу «Сеченовский вестник». -2016, № 2(24). –С. 34-35.
8. Калатанова А.В., Авдеева О.И., Макарова М.Н., Мужикян А.А., Шедько В.В., Ванатиев Г.В., Макаров В.Г., Карлина М.В., Пожарицкая О.Н. Использование защечных мешков хомяков при проведении доклинических исследований лекарственных средств, диспергируемых в полости рта// Фармация. -2016, №7. -С. 50-55.
9. Рыбакова А.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Использование кроликов в доклинических исследованиях// Международный вестник ветеринарии. -2016, № 4. –С. 102-106.
10. Гайдай Е.А., Макарова М.Н. Использование дегу как лабораторных животных// Международный вестник ветеринарии. -2017, № 1. –С. 57-66.
11. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Зоотехнические характеристики содержания карликовых свиней в экспериментальных вивариях// Международный вестник ветеринарии. -2017, № 1. –С. 66-74.
12. Макарова М.Н., Макаров В.Г., Рыбакова А.В., Зозуля О.К. Питание лабораторных животных. Основные рационы. Сообщение 1. // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 2. –С. 91-105.
13. Макарова М.Н., Макаров В.Г., Шекунова Е.В. Выбор вида животных для оценки нейротоксичности фармакологических веществ // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 2. –С. 106-113.
14. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Использование песчанок для биомедицинских исследований // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 2. –С. 117-124.
15. Бондарева Е.Д., Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Зоотехнические характеристики содержания морских свинок в экспериментальных вивариях // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 108-115.
16. Гущин Я.А., Мужикян А.А., Шедько В.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Сравнительная анатомия верхнего отдела желудочно-кишечного тракта экспериментальных животных и человека // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 116-129.
17. Макарова М.Н., Макаров В.Г. Питание лабораторных животных. Признаки дефицита и избытка белка, жира, углеводов и витаминов. Сообщение 2. // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 129-138.
18. Макарова М.Н., Рыбакова А.В., Кильдибеков К.Ю. Требования к освещенности в помещениях вивария и питомника лабораторных животных // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 138-147.
19. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Использование хомяков в биомедицинских исследованиях// Международный вестник ветеринарии. -2017, № 3. –С. 148-157.
20. Макарова М.Н., Макаров В.Г., Рыбакова А.В. Питание лабораторных животных. Признаки дефицита и избытка минеральных соединений. Сообщение 3 // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 4. –С. 110-116.
21. Мужикян А.А., Заикин К.О., Гущин Я.А., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Сравнительная морфология печени и желчного пузыря человека и лабораторных животных // Международный вестник ветеринарии. -2017, № 4. –С. 117-129.
22. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Использование морских свинок в биомедицинских исследованиях // Международный вестник ветеринарии. -2018, № 1. –С. 132-137.
23. Гущин Я.А., Мужикян А.А., Шедько В.В., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Сравнительная морфология нижнего отдела желудочно-кишечного тракта экспериментальных животных и человека // Международный вестник ветеринарии. -2018, № 1. – С. 138-150.
24. Rudenko L., Kiseleva I., Krutikova E., Stepanova E., Rekstin A., Donina S., Pisareva M., Grigorieva E., Kryshen K., Muzhikyan A., Makarova M., Sparrow E.G., Marie-Paule G.T. Rationale for vaccination with trivalent or quadrivalent live attenuated influenza vaccines: Protective vaccine efficacy in the ferret model // PLOS ONE. – 2018. – P. 1-19.
25. Рыбакова А.В., Макарова М.Н., Кухаренко А.Е., Вичаре A.С., Рюффер Ф.-Р. Существующие требования и подходы к дозированию лекарственных средств лабораторным животным // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. – 2018, 8(4). – С. 207-217.